UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR 

Facultad De Ciencias Agropecuarias Recursos Naturales Y Del Ambiente 

Carrera de Medicina Veterinaria 

 

Tema: 

EVALUACIÓN DE LOS GRUPOS SANGUÍNEOS Y CARACTERÍSTICAS 

MORFOLÓGICAS DE LOS COMPONENTES DE LA SANGRE EN GATOS 

Proyecto de Investigación previo a la obtención del título de Médicas Veterinarias Otorgado por la 

Universidad Estatal de Bolívar a través de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, Recursos 

Naturales y del Ambiente, Carrera de Medicina Veterinaria. 

 

Autoras: 

Lizbeth Vanessa Jiménez Naranjo 

Kely Magali Satian Saldaña 

 

Tutor: 

Dr. Washington Rolando Carrasco Mancero MSc. 

 

Guaranda – Ecuador 

 

2025 

 













 

 

 

I 

 

DEDICATORIA 

Este logro no es solo mío, es el fruto de un camino recorrido con el amor, apoyo y 

comprensión de personas maravillosas a las que hoy deseo rendir un sincero 

homenaje. 

A mi padre, José Jiménez, y a mi madre, Nancy Naranjo, gracias por su amor 

incondicional, por sus sacrificios silenciosos, por cada palabra de aliento y por su 

fe inquebrantable en mí. Ustedes son la base de todo lo que soy, este título es 

también suyo, porque sin ustedes, nada de esto habría sido posible. 

A mis hermanos Luis, Anahí, Mateo gracias por estar siempre, por sus palabras de 

ánimo y por ser mi compañía en los momentos buenos y en los difíciles. Su apoyo 

ha sido un pilar que me dio fuerza y alegría en este camino. 

A mi enamorado, Pablo Caiza, gracias por tu paciencia, tu amor constante y por 

caminar a mi lado con ternura y valentía. Gracias por ser mi sostén en los días 

difíciles y mi alegría en los momentos de triunfo. Tu compañía ha hecho este 

camino más llevadero y más hermoso. 

Y a mi jefe, el Dr. Carlos Larco, gracias por su confianza, por su comprensión y 

por brindarme su apoyo para poder equilibrar mis responsabilidades laborales con 

mis estudios. Su respaldo y su generosidad fueron clave para que hoy pueda 

celebrar este logro. 

Con el corazón lleno de gratitud, dedico este logro a cada uno de ustedes. Gracias 

por creer en mí, por acompañarme y por ayudarme a alcanzar esta meta, este 

triunfo es de todos nosotros. 

Gracias, infinitas gracias. 

 

Lizbeth Vanessa Jiménez Naranjo 

 

 

 



 

 

 

II 

 

DEDICATORIA 

Dedico este trabajo con todo mi corazón a mis padres, Maria Cecibel Saldaña y 

Rodrigo Satian, cuyo ejemplo de vida, esfuerzo incansable y amor incondicional 

han sido el faro que me ha guiado en cada paso de este camino. Gracias por 

enseñarme, con hechos y palabras, que los sueños se alcanzan con perseverancia y 

fe. 

A mis hermanos, Mónica y Wellington, por su compañía sincera y su apoyo 

constante. A Mónica, en especial, quien desde la distancia, en España, ha estado 

presente con su cariño, mensajes de aliento y ese amor que traspasa cualquier 

frontera. Y a Wellington, por su cercanía y por ser un apoyo silencioso pero firme 

en este proceso. 

A mis tías, primas y demás familiares quienes a pesar de la distancia me han 

brindado la motivación que tantas veces necesitaba, por creer en mí incluso 

cuando yo dudaba, por su respaldo inquebrantable. Su cariño y apoyo han sido 

fundamentales para alcanzar esta meta. 

A todos ustedes, gracias por ser mi fuerza cuando más la necesité. Este logro 

también es suyo. 

Kely Magali Satian Saldaña 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 

 

III 

 

AGRADECIMIENTO 

En este día tan significativo y lleno de emociones, deseo comenzar agradeciendo a 

Dios, por ser mi guía y fortaleza a lo largo de este camino. En cada momento de 

dificultad, en cada noche de desvelo, y en cada reto que pareció imposible, sentí 

su presencia dándome ánimo y sosteniéndome con su amor infinito.  

Gracias, Dios, por iluminar mi vida y permitirme llegar hasta aquí. 

A la Universidad, mi más profundo agradecimiento por brindarme una formación 

académica de calidad, por abrirme las puertas al conocimiento, y por ser el 

espacio donde no solo crecí profesionalmente, sino también como ser humano. 

A mis maestros y maestras, gracias por su entrega, por compartir su sabiduría, y 

por sembrar en mí no solo conocimientos, sino también valores, disciplina y 

pasión por aprender. Cada clase, cada palabra de aliento y cada enseñanza 

marcaron profundamente mi formación, ustedes han sido faros en este trayecto, y 

siempre les estaré agradecida. 

Lizbeth Vanessa Jiménez Naranjo 

 

 

Expreso mi más sincero agradecimiento a Dios, por darme la fortaleza y la sabiduría 

necesarias para culminar esta etapa académica. A la Universidad Estatal de Bolívar 

y a la administración encargada de la carrera de Medicina Veterinaria, por 

brindarme la oportunidad de formación profesional. 

A nuestro tutor el doctor Washington Carrasco, por su valiosa orientación, 

paciencia y compromiso durante el desarrollo de esta investigación. A nuestros par 

lectores doctor franklin y doctor Fernando, quienes con sus conocimientos y 

dedicación contribuyeron a mi crecimiento académico y personal. 

Finalmente, a mi compañera de investigación, por su apoyo y compañerismo en 

este proceso. 

Kely Magali Satian Saldaña 

 



 

 

 

IV 

 

ÍNDICE DE CONTENIDO 

CONTENIDO                                                                                                  PAG. 

CAPÍTULO I 1 

1.1. INTRODUCCIÓN 1 

1.2. PROBLEMA 3 

1.3. OBJETIVOS 4 

1.3.1. Objetivo general 4 

1.3.2. Objetivos específicos 4 

1.4. HIPÓTESIS 5 

CAPÍTULO II 6 

2. MARCO TEÓRICO 6 

2.1. Felis catus 6 

2.1.1. Domesticación 6 

2.1.2. Taxonomía 6 

2.1.3. Características fenotipicas de los gatos 7 

2.1.4. Razas de los gatos domésticos 7 

2.2. La sangre 10 

2.2.1. Plasma sanguíneo 10 

2.3. Componente de la sangre 11 

2.3.1. Eritrocito o glóbulos rojos 11 

2.3.2. Hemoglobina 13 

2.3.3. Micro-hematocrito 13 

2.3.4. Importancia clínica del micro-hematocrito 14 

2.3.5. Uso del micro-hematocrito en la trasfusión sanguínea 14 

2.3.6. Relación del micro-hematocrito con la tipificación sanguínea 14 



 

 

 

V 

 

2.3.7. Pasos para determinar el micro-hematocrito 15 

2.3.8. Eritrograma 16 

2.3.9. Leucograma 16 

2.3.10. Plaquetas 18 

2.4. Sólidos totales 20 

2.4.1. Refractómetro como método de determinación de sólidos totales 20 

2.5. Grupos sanguíneos en gatos 21 

2.5.1. Antígeno A 21 

2.5.2. Antígeno B 22 

2.5.3. Antígeno AB 23 

2.6. Tipificación sanguínea en gatos 23 

2.6.1. Anticuerpos naturales que considerar en la tipificación sanguínea 24 

2.6.2. Ventajas y desventajas de la tipificación sanguínea en gatos 25 

2.6.3. Importancia clínica de la tipificación sanguínea en gatos 26 

2.6.4. Pruebas para el diagnóstico del grupo sanguínea en gatos 26 

2.6.5. Técnica inmunocromatográfica de tipificación sanguínea 27 

2.6.6. Crossamatching en gatos 28 

2.7. Importancia de la citología en la tipificación sanguínea 28 

2.7.1. Pasos para realizar una citología sanguínea 29 

CAPÍTULO III 31 

3. MARCO METODOLÓGICO 31 

3.1. Ubicación y características de la investigación 31 

• Localización del experimento 31 

• Situación geográfica y edafoclimática 31 

• Zona de vida 31 



 

 

 

VI 

 

3.2. Metodología 32 

3.2.1. Material en estudio 32 

3.2.2. Factores en estudio 32 

3.2.3. Tipo de diseño experimental                                                                        34 

3.2.4. Manejo de la investigación 32 

3.2.5. Métodos de evaluación 35 

3.2.6. Análisis de datos 36 

CAPÍTULO IV 37 

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 37 

4.1. Interpretación de resultados 37 

4.1.1. Raza de los felinos 37 

4.1.2. Sexo de los felinos 39 

4.1.3. Edad de los felinos 41 

4.1.4. Peso de los felinos 43 

4.1.5. Estado reproductivo 45 

4.1.6. Tipificación sanguínea 47 

4.1.7. Hematocrito 49 

4.1.8. Sólidos totales 51 

4.1.9. Morfología celular 53 

4.2. Comprobación de hipótesis 55 

CAPITULO V 56 

5.1. Conclusiones 56 

5.2. Recomendaciones 57 

BIBLIOGRAFÍA 58 

ANEXOS 



 

 

 

VII 

 

ÍNDICE DE TABLAS 

NO                                                      DETALLE                                            PAG 

1. Taxonomía del gato doméstico 6 

2. Descripción técnica del ensayo 32 

3. Análisis de la raza de los felinos en estudio 37 

4. Análisis del sexo de los felinos en estudio 39 

5. Análisis de los grupos etarios de los felinos en estudio 41 

6. Análisis del peso de los felinos en estudio 43 

7. Análisis del estado reproductivo de los felinos en estudio 45 

8. Análisis de la tipificación de los felinos en estudio 47 

9. Análisis del hematocrito de los felinos en estudio 49 

10. Análisis de sólidos totales de los felinos en estudio 51 

11. Análisis de la morfología de los hematíes de los felinos en estudio 53 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 

 

VIII 

 

ÍNDICE DE FIGURAS 

NO                                                      DETALLE                                            PAG 

1. Porcentaje de las razas de los felinos en estudio 37 

2. Porcentaje del sexo de los felinos en estudio 39 

3. Porcentaje de los grupos etarios de los felinos en estudio 41 

4. Porcentaje de los intervalos del peso de los felinos en estudio 43 

5. Porcentaje del estado reproductivo de los felinos en estudio 45 

6. Porcentaje de la tipificación de los felinos en estudio 47 

7. Porcentaje del hematocrito de los felinos en estudio 49 

8. Porcentaje de los sólidos totales de los felinos en estudio 51 

9. Porcentaje de la morfología de los hematíes de los felinos en estudio 53 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 

 

IX 

 

ÍNDICE DE ANEXOS 

NO                                                      DETALLE                                            

1. Lugar de investigación.  

2. Base de datos 

3. Fotografías de la investigación 

4. Glosario de términos 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 

 

X 

 

RESUMEN 

El tipo sanguíneo felino constituye un elemento crítico en la medicina transfusional 

veterinaria, debido a la presencia de antígenos eritrocitarios con implicaciones 

clínicas en la compatibilidad entre donantes y receptores. El presente estudio tuvo 

como objetivo evaluar los grupos sanguíneos y las características morfológicas de 

los componentes de la sangre en gatos domésticos (Felis catus). Se desarrolló un 

estudio observacional y descriptivo en la Clínica Veterinaria de la Universidad 

Estatal de Bolívar (Guaranda, Ecuador), con una población de 40 felinos. Las 

variables analizadas incluyeron raza, sexo, edad, peso, estado reproductivo, 

tipificación sanguínea, hematocrito, sólidos totales y morfología celular. La 

tipificación sanguínea, realizada mediante reactivos específicos, demostró 

homogeneidad absoluta, ya que el 100% de los individuos correspondió al grupo 

sanguíneo A, sin presencia de los grupos B o AB. En cuanto a los parámetros 

hematológicos, el 92,5% de los felinos presentó valores de hematocrito dentro del 

rango fisiológico (media: 37%; IQR: 35–40%), mientras que el 7,5% mostró 

valores inferiores al mínimo referencial. Además, los sólidos totales evidenciaron 

desviación respecto al rango normal, ya que el 97,5% de los individuos presentó 

valores elevados, con una media de 10,21 g/dL (IQR: 9,25–10,45 g/dL), sugiriendo 

posibles procesos de hemoconcentración o deshidratación subclínica. El análisis 

citomorfológico reveló un predominio de eritrocitos en rouleaux en el 85% de las 

muestras, mientras que alteraciones morfológicas como esferocitos, poiquilocitosis, 

excentrocitos, dacriocitos, anisocitosis, procalicitosis y acantocitos fueron escasas 

(2,5% cada una). En conjunto, los hallazgos confirman la prevalencia exclusiva del 

grupo sanguíneo A en la población estudiada, así como la estabilidad de los 

parámetros hematológicos y morfológicos, lo que respalda un adecuado estado 

sanitario general de los felinos evaluados. 

Palabras clave: grupo sanguíneo felino, hematocrito, sólidos totales, morfología 

eritrocitaria, transfusión sanguínea. 

 

 



 

 

 

XI 

 

SUMMARY 

Feline blood type is a critical factor in veterinary transfusion medicine due to the 

presence of erythrocyte antigens with clinical implications for donor–recipient 

compatibility. This study aimed to evaluate blood groups and the morphological 

characteristics of blood components in domestic cats (Felis catus). An observational 

and descriptive study was conducted at the Veterinary Clinic of the Universidad 

Estatal de Bolívar (Guaranda, Ecuador), involving a population of 40 cats. The 

variables analyzed included breed, sex, age, weight, reproductive status, blood 

typing, hematocrit, total solids, and cellular morphology. Blood typing performed 

with specific reagents demonstrated absolute homogeneity, with 100% of the 

individuals classified as blood type A, and no evidence of types B or AB. Regarding 

hematological parameters, 92.5% of the cats exhibited hematocrit values within the 

physiological range (mean: 37%; IQR: 35–40%), while 7.5% showed values below 

the reference threshold. In contrast, total solids deviated from the normal range, 

with 97.5% of individuals presenting elevated values (mean: 10.21 g/dL; IQR: 

9.25–10.45 g/dL), suggesting potential hemoconcentration or subclinical 

dehydration. Cytomorphological analysis revealed a predominance of rouleaux 

erythrocytes in 85% of samples, while morphological alterations such as 

spherocytes, poikilocytosis, excentrocytes, dacryocytes, anisocytosis, 

procalicocytosis, and acanthocytes were rare (2.5% each). Overall, the findings 

confirm the exclusive prevalence of blood group A in the population studied, as 

well as the stability of hematological and morphological parameters, which 

supports an adequate general health status of the cats evaluated. 

Keywords: feline blood type, hematocrit, total solids, erythrocyte morphology, 

blood transfusion. 

 

 



 

 
1 

 

CAPÍTULO I 

1.1. INTRODUCCIÓN 

La sangre es un tejido conectivo líquido compuesto por plasma y células 

sanguíneas, que incluye eritrocitos, leucocitos y plaquetas. Los eritrocitos de los 

gatos, al igual que en otros mamíferos, contienen hemoglobina para el transporte 

de oxígeno desde los pulmones a los tejidos, y dióxido de carbono de regreso a los 

pulmones para su eliminación (Wardrop, 2022). 

Se puede tipificarse la sangre dentro de grupos limitados de diferenciación clínica, 

está tipificación se da de acuerdo con los elementos presentes en la membrana de 

los eritrocitos, como glucolípidos o glucoproteínas, los cuales se denominan 

antígenos. Estos componentes definen el grupo de clasificación sanguínea al cual 

pertenece la muestra (Park et al., 2022). 

En los gatos, los grupos sanguíneos se organizan al sistema AB, que incluye tres 

tipos principales: A, B y AB. El grupo A es el más común, especialmente en gatos 

domésticos, mientras que el grupo B se encuentra principalmente en razas puras. El 

grupo AB es extremadamente raro y permite la recepción de sangre tanto de 

donantes A como B, los gatos tienen anticuerpos naturales contra grupos 

sanguíneos incompatibles, lo que puede causar reacciones hemolíticas graves, 

incluso en la primera transfusión. Por ello, es fundamental realizar una tipificación 

sanguínea y pruebas de crossmatching antes de transfundir, asegurando la 

compatibilidad y minimizando riesgos clínicos y reacciones adversas a la 

transfusión (Callan, 2022). 

Los grupos sanguíneos en los gatos domésticos varía según la población y la raza, 

el grupo A es el más común a nivel mundial y se encuentra en la mayoría de los 

gatos de pelo corto y largo. En contraste, el grupo B es más frecuente en razas puras, 

como el Devon Rex, Cornish Rex, British Shorthair, y ciertas líneas de Persas y 

Exóticos. El grupo AB es extremadamente raro entre todas las razas. Estas 

variaciones son influenciadas por factores genéticos y geográficos, ya que, por 



 

 
2 

 

ejemplo, en Europa y Australia, las razas puras tienen una mayor proporción de 

gatos con el grupo B en comparación con Norteamérica (Vikartovska et al., 2021).  

La población felina en Ecuador significativamente amplia, aunque los datos exactos 

aún son limitados. Según el censo del 2022, entre perros y gatos hay 

aproximadamente 4.1 millones de gatos en los hogares ecuatorianos, determinar los 

grupos sanguíneos en gatos en Ecuador es esencial para mejorar la medicina 

transfusional felina en el país. La distribución de los grupos sanguíneos A, B y AB 

en las diferentes regiones, se pueden diseñar bancos de sangre más eficientes, 

garantizar la disponibilidad de donantes compatibles y evitar reacciones adversas 

durante transfusiones (Pierini et al., 2024) 

Establecer los grupos sanguíneos en gatos de la ciudad de Guaranda, es fundamental 

para mejorar la atención veterinaria y garantizar transfusiones seguras y efectivas, 

esta información permite identificar los tipos A, B y AB, facilitando la creación de 

bancos de sangre compatibles y reduciendo el riesgo de reacciones adversas durante 

transfusiones. Además, debido a la distribución geográfica y genéticas específicas 

de las poblaciones felinas en la región andina, estos estudios pueden proporcionar 

datos relevantes para diseñar protocolos de manejo clínico adaptados a la realidad 

local. Esto no solo beneficia a los gatos domésticos en Guaranda, sino que también 

promueve la salud animal general en zonas rurales y urbanas circundantes 

(Faulhaber et al., 2021).  

La principal razón para realizar una tipificación sanguínea es garantizar una 

transfusión compatible, minimizando las complicaciones clínicas que pueden 

acarrear la incompatibilidad. Las transfusiones se han vuelto cada vez más comunes 

en la medicina veterinaria, siendo utilizadas como tratamiento para diversas 

afecciones, como la anemia severa (con un hematocrito inferior al 15% del rango 

normal), hipovolemia, trastornos de la coagulación y hemorragias graves, entre 

otros. Una correcta tipificación es esencial para asegurar la seguridad y eficacia del 

procedimiento (Ebelt et al., 2020). 

 

 



 

 
3 

 

1.2. PROBLEMA  

La ausencia de información científica sobre los grupos sanguíneos felinos en 

Ecuador, particularmente en Guaranda, provincia de Bolívar, constituye una 

problemática crítica que compromete la calidad de la atención médica veterinaria y 

la seguridad de los procedimientos transfusionales en gatos. Esta carencia de datos 

específicos sobre la distribución de los tipos sanguíneos en la población felina local 

genera múltiples desafíos clínicos 

La incompatibilidad sanguínea en felinos representa un riesgo letal debido a la 

presencia natural de anticuerpos contra grupos sanguíneos diferentes al propio. Los 

gatos del grupo B poseen anticuerpos anti-A altamente hemolíticos, mientras que 

los gatos del grupo A presentan anticuerpos anti-B de menor intensidad, pero 

igualmente peligrosos. Esta característica inmunológica única hace que las 

transfusiones sin tipificación previa puedan desencadenar reacciones hemolíticas 

agudas severas, shock anafiláctico e incluso la muerte del paciente receptor. 

La falta de protocolos de caracterización sanguínea estandarizados impide el 

establecimiento de bancos de sangre felina especializados, infraestructura esencial 

para garantizar la disponibilidad de unidades sanguíneas compatibles en situaciones 

de emergencia. Sin un banco de sangre estructurado y con donantes, los veterinarios 

se ven obligados a realizar transfusiones de emergencia sin conocer la 

compatibilidad, exponiendo a los pacientes a riesgos transfusionales evitables. 

Además, la ausencia de estudios morfológicos mediante frotis sanguíneos en el 

contexto de la tipificación felina limita la evaluación hematológica integral. Esta 

herramienta diagnóstica es fundamental para detectar alteraciones celulares, 

evaluar la calidad de las unidades sanguíneas para transfusión e identificar 

patologías concurrentes que podrían contraindicar el procedimiento transfusional. 

En el contexto específico de Guaranda, esta problemática se agudiza debido a la 

limitada infraestructura de laboratorios veterinarios especializados y la falta de 

capacitación del personal técnico en técnicas de tipificación sanguínea felina.  

 



 

 
4 

 

1.3. OBJETIVOS  

1.3.1. Objetivo general  

Evaluar los grupos sanguíneos y características morfológicas de los componentes 

de la sangre en gatos. 

1.3.2. Objetivos específicos 

• Tipificar los grupos sanguíneos en gatos 

• Cuantificar el hematocrito y sólidos totales de los grupos sanguíneos 

• Establecer las características citomorfológicas de las muestras sanguíneas 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 
5 

 

1.4. HIPÓTESIS 

Ho: Los grupos sanguíneos de los felinos no afectan la morfológicas de los 

componentes de la sangre. 

 

Ha: Los grupos sanguíneos de los felinos si afectan la morfológicas de los 

componentes de la sangre. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 
6 

 

CAPÍTULO II  

2. MARCO TEÓRICO  

2.1. Felis catus 

2.1.1. Domesticación 

El gato doméstico (Felis catus) es un mamífero carnívoro perteneciente a la familia 

Felidae, cuya domesticación se remonta a aproximadamente 9.000 años atrás en el 

Cercano Oriente especialmente en la región del Creciente Fértil (actuales Israel, 

Palestina, Irak y Siria). Estudios genéticos señalan que desciende del gato montés 

africano (Felis lybica), y que la domesticación ocurrió probablemente de forma 

gradual, cuando los humanos comenzaron a almacenar granos y los gatos se 

acercaban atraídos por los roedores. A diferencia del perro, cuya domesticación 

implicó una selección más dirigida por parte del hombre, el gato mantuvo muchas 

de sus conductas silvestres (Lucena et al., 2025).  

2.1.2. Taxonomía 

Tabla 1.  

Taxonomía del gato doméstico 

Reino Animalia 

Filo Chordata 

Clase Mammalia 

Orden Carnivora 

Familia Felidae 

Género Felis 

Especie Felis catus 

Fuente: (Salgado, 2025). 



 

 
7 

 

2.1.3. Características fenotipicas de los gatos 

Los gatos domésticos presentan una notable diversidad fenotípica, observable en su 

tamaño, tipo y color de pelaje, forma corporal, y características faciales. El peso 

promedio en adultos oscila entre 3 y 5 kg, y su cuerpo es ágil, musculoso y 

altamente flexible. Poseen visión nocturna excelente, agudo sentido del oído y un 

comportamiento predominantemente crepuscular. El pelaje puede variar entre 

corto, semilargo o largo, con patrones como atigrado, unicolor, bicolor, tricolor o 

puntiagudo. Estas diferencias no solo responden a criterios estéticos, sino también 

a procesos de selección artificial y adaptación al entorno (Souza & Carvalho, 2025). 

2.1.4. Razas de los gatos domésticos 

A lo largo del proceso de domesticación, la selección artificial ha dado origen a 

diversas razas de gatos domésticos, cada una con características morfológicas, 

conductuales y clínicas particulares (Maldonado & Gómez, 2022). 

2.1.4.1. Siamés 

El gato siamés es originario de Tailandia (antiguamente Siam) y es una de las razas 

más antiguas y reconocidas a nivel mundial. Posee un cuerpo estilizado, de tamaño 

mediano a grande, con extremidades largas, cabeza triangular y orejas grandes. Su 

pelaje es corto y fino, con patrón colorpoint (claro en el cuerpo y oscuro en 

extremidades, cara, orejas y cola) (Turner, 2021). 

• Comportamiento: Es extremadamente sociable, vocal y afectuoso. Tiende a 

crear fuertes vínculos con sus cuidadores y es conocido por su necesidad de 

atención constante. 

• Consideraciones clínicas: El siamés puede ser propenso a problemas 

respiratorios, estrabismo congénito y enfermedades cardíacas hereditarias, 

como la miocardiopatía hipertrófica. 

• Tipo de sangre predominante: Tipo A, es la variante más común en esta 

raza. El tipo B es muy raro. Esto es relevante para evitar reacciones 

transfusionales o incompatibilidad neonatal. 



 

 
8 

 

2.1.4.2. Persa 

De origen incierto, pero desarrollado principalmente en Inglaterra e Irán, el gato 

persa es una de las razas más populares y reconocidas por su pelaje largo y su cara 

achatada (braquicefalia). Su cuerpo es robusto y compacto, con patas cortas y cola 

espesa (Theros et al., 2023). 

• Comportamiento: Es tranquilo, dócil y poco activo. Se adapta bien a 

ambientes interiores y es ideal para personas que buscan una mascota 

serena. 

• Consideraciones clínicas: Su morfología braquicéfala lo hace susceptible a 

trastornos respiratorios crónicos, problemas oculares (epífora, entropión) y 

enfermedades dermatológicas como la seborrea. Además, su pelaje requiere 

cepillado diario para evitar la formación de nudos. 

• Tipo de sangre predominante: Tipo B. Esta raza tiene una alta incidencia de 

tipo B. Esto requiere especial atención en transfusiones y reproducción, ya 

que los gatitos tipo A de madres tipo B. 

2.1.4.3. Maine Coon 

Originario de Estados Unidos, el Maine Coon es una de las razas de gatos más 

grandes, con machos que pueden superar los 8-9 kg. Tiene un cuerpo musculoso, 

orejas grandes con mechones (parecidas a las del lince), y un pelaje semilargo 

resistente al clima frío (Gharbi et al., 2024). 

• Comportamiento: Es conocido como el "gigante gentil", debido a su 

naturaleza afectuosa, sociable y tolerante. Suele llevarse bien con niños y 

otros animales. 

• Consideraciones clínicas: Presenta predisposición a la miocardiopatía 

hipertrófica (MCH), enfermedad cardíaca común en esta raza, y también a 

displasia de cadera. Requiere chequeos cardiológicos. 

• Tipo de sangre predominante: Tipo A. El tipo A es muy frecuente en esta 

raza; el tipo B es poco común, aunque no ausente. Se recomienda tipificar 

antes de transfundir o cruzar. 



 

 
9 

 

2.1.4.4. Sphynx 

Esta raza sin pelo se originó en Canadá en la década de 1960 a partir de una 

mutación espontánea. Su piel es arrugada, caliente al tacto y puede presentar 

pigmentaciones variadas. Carece de pelaje visible, aunque puede tener una ligera 

capa de vello (Holst, 2022). 

• Comportamiento: Es extremadamente afectuoso, curioso, activo y apegado 

a sus cuidadores. Tiene un temperamento similar al del perro en términos 

de interacción social. 

• Consideraciones clínicas: Debido a la falta de pelo, necesita protección 

contra temperaturas extremas, baños regulares para eliminar secreciones 

sebáceas, y cuidado dermatológico. Es propenso a enfermedades cardíacas 

como la MCH y puede tener hipersensibilidad cutánea. 

• Tipo de sangre predominante: Tipo A, aunque también se presenta el tipo B 

con frecuencia moderada. Se recomienda siempre tipificar antes de 

cualquier cruce o transfusión. 

2.1.4.5. British Shorthair 

Raza originaria del Reino Unido, caracterizada por su cuerpo compacto, musculoso 

y rostro redondeado. Su pelaje es corto, denso y suave, y sus ojos suelen ser grandes 

y expresivos. El color azul (gris) es el más común, aunque hay más de 30 variantes 

de color reconocidas (Almeida, 2023). 

• Comportamiento: Tranquilo, reservado y poco demandante de atención 

constante. Es ideal para personas con un estilo de vida relajado. Suele 

llevarse bien con otros animales. 

• Consideraciones clínicas: Generalmente es saludable, aunque puede ser 

propenso a obesidad si no se controla su dieta. También se ha asociado a 

ciertos casos de hemofilia B y cardiopatías hereditarias. 

• Tipo de sangre predominante: Tipo B con una proporción significativa. 

Algunos estudios indican que hasta un 40-50% de los British Shorthair 

pueden tener sangre tipo B. 



 

 
10 

 

2.2. La sangre 

La sangre, conocida también como tejido sanguíneo, es un tipo de tejido conjuntivo 

especializado que, aunque no conecta físicamente un tejido con otro, cumple una 

función esencial al interrelacionar las distintas partes del cuerpo, transportando 

diversas sustancias entre conjuntos de células (Artherton & Mason, 2022). 

La sangre se clasifica como parte del tejido conjuntivo debido a su origen 

embrionario en la mesénquima, un tejido primitivo compuesto por células 

indiferenciadas y pluripotentes, que pueden desarrollarse en diferentes tipos de 

células con morfologías y funciones variadas, según su código genético y el entorno 

que las rodea (McCourt & Rizzi, 2022). 

2.2.1. Plasma sanguíneo 

El plasma sanguíneo es el componente fluido extracelular de la sangre, 

representando el 55% de su volumen total. Tiene un color ámbar claro y un pH 

ligeramente alcalino, que oscila entre 7.3 y 7.4. Está formado por diversas 

sustancias inorgánicas y orgánicas (Grebert et al., 2021). 

El plasma contiene componentes inorgánicos y orgánicos. Los primeros representan 

el 90% del plasma; el más abundante de ellos es el agua, que actúa como disolvente 

y da fluidez al tejido. El resto son aniones como el cloruro, bicarbonato, fosfatos y 

sulfatos, y cationes como el calcio, potasio, sodio, magnesio, etc. Otros elementos, 

llamados oligoelementos, como el hierro, cobre, cobalto, manganeso y yodo se 

encuentran en porcentajes muy bajos, aunque su presencia es fundamental para 

mantener la homeostasis y la salud del animal (Miglio et al., 2023).  

Las proteínas de la sangre, también llamadas proteínas plasmáticas, son proteínas 

presentes en el plasma sanguíneo. Cumplen muchas funciones diferentes, entre ellas 

el transporte de lípidos, hormonas, vitaminas y minerales en la actividad y el 

funcionamiento del sistema inmunitario. Otras proteínas de la sangre actúan como 

enzimas, componentes del complemento, inhibidores de proteasas o precursores de 

quininas. Contrariamente a la creencia popular, la hemoglobina no es una proteína 

de la sangre, ya que se transporta dentro de los glóbulos rojos, en lugar de en el 

suero sanguíneo (Johnson et al., 2023).  



 

 
11 

 

La albúmina sérica representa el 55% de las proteínas sanguíneas, es un importante 

contribuyente al mantenimiento de la presión oncótica del plasma y ayuda, como 

transportador, en el transporte de lípidos y hormonas esteroides. Las globulinas 

constituyen el 38% de las proteínas sanguíneas y transportan iones, hormonas y 

lípidos que ayudan a la función inmunológica. El fibrinógeno comprende el 7% de 

las proteínas sanguíneas; la conversión de fibrinógeno a fibrina insoluble es 

esencial para la coagulación sanguínea. El resto de las proteínas plasmáticas (1%) 

son proteínas reguladoras, como enzimas, proenzimas y hormonas (Thongsahuan 

et al., 2020).  

2.3. Componente de la sangre 

La sangre está compuesta por plasma (la parte líquida que transporta nutrientes, 

hormonas y desechos), glóbulos rojos o eritrocitos (que transportan oxígeno), 

glóbulos blancos o leucocitos (responsables de la defensa inmunitaria) y plaquetas 

(encargadas de la coagulación) (McCourt & Rizzi, 2022). 

2.3.1. Eritrocito o glóbulos rojos 

Los eritrocitos maduros del gatos, caballos y rumiantes suelen ser muy similares en 

cuanto a la ausencia de núcleo, su color rojizo o rojizo-anaranjado, y su forma 

discoidal bicóncava. Las principales diferencias entre ellos están relacionadas con 

el tamaño y la palidez central, que es la zona más clara ubicada en el centro de la 

célula. En el caso de los eritrocitos, presentan la palidez central más pronunciada y 

también carecen de núcleo (Yadav et al., 2022).  

La principal función de los eritrocitos es transportar hemoglobina, una proteína 

esencial encargada de transportar oxígeno desde los pulmones hasta los tejidos del 

cuerpo. Además, los eritrocitos desempeñan un papel importante en la eliminación 

del dióxido de carbono, ya que recogen este gas de los tejidos y lo transportan de 

regreso a los pulmones para su exhalación, contribuyendo así al equilibrio ácido-

base del organismo y al mantenimiento de la homeostasis (Barger, 2022). 

Citología de los eritrocitos; Los glóbulos rojos tienen un diámetro de 

aproximadamente 7 micrómetros (µm) y tienen forma de disco bicóncavo con una 

palidez central prominente (Harvey, 2022). 



 

 
12 

 

En la citología, los eritrocitos pueden mostrar alteraciones morfológicas que 

indican diversas patologías. Algunas de las principales patologías asociadas con los 

eritrocitos incluyen: 

• Anemia: Anemia regenerativa: Se observa la presencia de reticulocitos 

(eritrocitos inmaduros), anisocitosis (variación en el tamaño) y policromasia 

(eritrocitos con diferentes tonalidades de color debido a la inmadurez). 

Anemia no regenerativa: Caracterizada por la ausencia de reticulocitos y un 

conteo reducido de eritrocitos (Tvedten, 2022). 

• Esferocitosis: Aparición de eritrocitos esféricos y pequeños (esferocitos) en 

lugar de la forma discoidal. Es común en casos de anemia hemolítica 

inmunomediada (AHIM) (Lundorff & Anne, 2023). 

• Heinz Bodies: Inclusiones citoplasmáticas visibles como pequeñas 

proyecciones en el eritrocito. Estas se asocian con daño oxidativo causado 

por toxinas (como cebolla, ajo o ciertos fármacos) o enfermedades 

metabólicas como la diabetes mellitus (Geisen et al., 2023). 

• Poquilocitosis: Eritrocitos con formas anormales o irregulares 

(poiquilocitos). Puede observarse en: Enfermedades hepáticas. Deficiencias 

nutricionales severas. Desórdenes metabólicos (McCourt & Rizzi, 2022). 

• Acanocitos: Eritrocitos con proyecciones irregulares. Asociados con: 

Enfermedad hepática (como hemangiosarcoma). Lipidosis hepática 

(Montoya et al., 2022). 

• Esquistocitos: Fragmentos de eritrocitos irregulares, indicativos de daño 

mecánico en los vasos sanguíneos, como ocurre en la coagulación 

intravascular diseminada (CID) o en microangiopatías (Barger, 2022). 

• Hipocromía: Eritrocitos con una palidez central exagerada, lo que indica 

una disminución en el contenido de hemoglobina. Suele relacionarse con 

anemias ferropénicas (por deficiencia de hierro) (Moloney et al., 2023). 

• Policromasia: Eritrocitos con tonalidades más azuladas o grisáceas, 

indicativos de regeneración de la médula ósea en respuesta a anemia 

regenerativa (Dank et al., 2020). 



 

 
13 

 

• Microcitosis: Eritrocitos de tamaño más pequeño de lo normal. Asociados 

con deficiencia de hierro o algunas enfermedades crónicas como el shunt 

portosistémico (Polak et al., 2022). 

• Rouleaux: Aglomeraciones de eritrocitos en forma de "pilas de monedas", 

normales, pero si es prominente puede estar relacionado con inflamaciones 

o hiperglobulinemia (Jorge et al., 2022). 

2.3.2. Hemoglobina 

La hemoglobina es una proteína globular que se encuentra dentro de los eritrocitos 

(glóbulos rojos) y cuya función principal es el transporte de oxígeno desde los 

pulmones hacia los tejidos, así como el retorno del dióxido de carbono hacia los 

pulmones para su eliminación. Su composición incluye cuatro cadenas 

polipeptídicas (dos α y dos β en la forma adulta) y un grupo hemo por cada cadena, 

con un átomo de hierro (Fe²⁺) central capaz de unirse reversiblemente al oxígeno 

(McCourt & Rizzi, 2022). 

En los gatos domésticos, los niveles normales de hemoglobina se encuentran entre 

8 a 15 g/dL, con variaciones según edad, estado fisiológico, hidratación y condición 

clínica. Los gatos tienden a tener valores de hemoglobina ligeramente más bajos 

que los perros. Vida media del eritrocito felino: aproximadamente 70 días (en perros 

es de 110 días). Tamaño del eritrocito: más pequeño que en otras especies, y menos 

centralización del área pálida (normocromáticos) (McCourt & Rizzi, 2022). 

2.3.3. Micro-hematocrito 

El microhematocrito (también conocido como hematocrito capilar o packed cell 

volume - PCV) constituye uno de los parámetros hematológicos más fundamentales 

en medicina veterinaria felina. Esta prueba diagnóstica básica pero esencial 

proporciona información crítica sobre el estado hematológico del paciente y 

representa una herramienta indispensable tanto en la evaluación clínica rutinaria 

como en situaciones de emergencia, especialmente en el contexto de medicina 

transfusional (Dallarosa et al., 2023). 

El microhematocrito se define como el porcentaje del volumen total de sangre 

ocupado por los glóbulos rojos (eritrocitos) después de la centrifugación. Este 



 

 
14 

 

parámetro refleja directamente la concentración de eritrocitos en la sangre y 

proporciona una evaluación rápida y confiable del estado de oxigenación y 

capacidad de transporte de oxígeno del organismo felino (Chumak et al., 2024). 

2.3.4. Importancia clínica del micro-hematocrito 

La técnica del microhematocrito se basa en la separación física de los componentes 

sanguíneos mediante centrifugación a alta velocidad, donde los elementos celulares 

se estratifican según su densidad específica, permitiendo la medición precisa del 

volumen ocupado por los eritrocitos en relación al volumen (Hunt & Jugan, 2020).  

El microhematocrito representa el método más rápido y accesible para detectar y 

cuantificar la anemia en gatos. Los valores disminuidos de hematocrito permiten: 

• Diagnóstico temprano de anemia: Identificación precoz de estados 

anémicos antes de que se manifiesten signos clínicos 

• Clasificación de severidad: Determinación del grado de anemia (leve, 

moderada, severa) para establecer prioridades terapéuticas. 

• Monitoreo evolutivo: Seguimiento de la respuesta al tratamiento y 

progresión de la enfermedad (Zeiler et al., 2024). 

2.3.5. Uso del micro-hematocrito en la trasfusión sanguínea 

Establece umbrales objetivos para la indicación de transfusiones sanguíneas. En 

gatos, se considera indicación de transfusión cuando el hematocrito desciende por 

debajo del 12-15% en animales estables o 20%. También se debe evaluar el 

donante, ya que los gatos donantes deben mantener valores de hematocrito 

superiores al 35-40% para garantizar su aptitud para la donación sin comprometer 

su estado de salud (Uva et al., 2023). 

2.3.6. Relación del micro-hematocrito con la tipificación sanguínea 

El micro-hematocrito es una prueba de diagnóstico utilizada para medir el 

porcentaje de glóbulos rojos en una muestra de sangre, y está relacionada con la 

tipificación sanguínea de manera indirecta. El rango normal de microhematocrito 

en gatos suele estar entre 24% y 45%, dependiendo de factores como la raza, edad, 

estado de salud y condiciones específicas del animal. Cuando se realiza un análisis 



 

 
15 

 

de micro-hematocrito, los resultados indican el nivel de hematocrito (que se expresa 

como un porcentaje del volumen total de sangre) y proporciona información sobre 

la salud general del animal, en particular sobre su capacidad para transportar 

oxígeno. Un nivel bajo de hematocrito puede indicar anemia o pérdida significativa 

de glóbulos rojos, lo que es crítico considerar cuando se realiza una transfusión 

sanguínea (Pedraza, 2024). 

• Compatibilidad de la sangre: Si un donador está recibiendo una transfusión, 

la tipificación sanguínea es crucial para evitar reacciones inmunológicas. Si 

el gato tiene un hematocrito bajo debido a anemia, las pruebas de 

tipificación aseguran que los glóbulos rojos transfundidos coincidan con los 

del receptor para evitar reacciones adversas. 

• Evaluación del estado de salud: Antes de realizar una transfusión, la 

tipificación sanguínea y el análisis del micro-hematocrito ayudan a los 

veterinarios a determinar si el gato puede recibir sangre compatible sin 

complicaciones adicionales, especialmente si su capacidad para transportar 

oxígeno ya está comprometida por un hematocrito bajo. 

Es crucial realizar la determinación del micro-hematocrito antes de realizar una 

tipificación sanguínea en gatos, ya que este análisis permite evaluar el estado 

general de la sangre del animal (Pedraza, 2024). 

2.3.7. Pasos para determinar el micro-hematocrito 

Los pasos para realizar un micro-hematocrito son los siguientes: 

• Recolección de la muestra de sangre: Se obtiene una pequeña cantidad de 

sangre del gato, generalmente a través de una punción venosa, utilizando 

una jeringa con anticoagulante (EDTA). 

• Preparación del capilar de hematocrito: Se coloca una gota de sangre en un 

capilar de hematocrito (un tubo pequeño de vidrio o plástico). Asegúrate de 

llenar el capilar aproximadamente en un 2/3 (Angulo, 2021). 

• Sellado del capilar: Una vez llenado el capilar con sangre, se sella el 

extremo abierto con una pequeña cantidad de cera o con un tapón adecuado 

para evitar que la sangre se derrame. 



 

 
16 

 

• Centrifugación: Coloca el capilar en una centrífuga de hematocrito, 

asegurándote de que esté equilibrado (si tienes varios capilares, asegúrate 

de colocar otro en el lado opuesto del capilar de muestra). Centrifuga a alta 

velocidad, típicamente entre 10,000 y 12,000 revoluciones por minuto, 

durante 5-10 minutos. 

• Lectura del resultado: Después de la centrifugación, la sangre se separará 

en sus componentes: plasma en la parte superior, capa leucocitaria (si hay), 

y glóbulos rojos (en la parte inferior). Utiliza una escala graduada o un lector 

de hematocrito para medir la altura de la columna de glóbulos rojos. 

2.3.8. Eritrograma  

El eritrograma en gatos es un análisis que evalúa las características y la cantidad de 

glóbulos rojos (eritrocitos) en la sangre. Este examen proporciona información 

crucial sobre la salud hematológica del animal, ya que mide parámetros como la 

concentración de hemoglobina, el hematocrito (porcentaje de glóbulos rojos en el 

volumen total de sangre), el volumen corpuscular medio (VCM), y la concentración 

de hemoglobina corpuscular media (CHCM), entre otros. En gatos, el eritrograma 

también puede detectar anemias, que pueden ser causadas por diversas condiciones 

como hemorragias, enfermedades infecciosas, o problemas medulares. Un 

eritrograma anormal puede indicar alteraciones en la producción, vida útil o 

destrucción de los glóbulos rojos (Fernández et al., 2024). 

2.3.9. Leucograma 

Los leucocitos, o glóbulos blancos, desempeñan un papel crucial en la respuesta 

inmunitaria durante las transfusiones sanguíneas. Si bien su presencia es esencial 

para combatir infecciones y mantener la defensa inmunológica, pueden ser un factor 

problemático en este contexto. Durante una transfusión sanguínea, los leucocitos 

presentes en la sangre donada pueden provocar reacciones adversas en el receptor, 

como fiebre no hemolítica, inflamación o incluso activación del sistema 

inmunitario contra los glóbulos blancos transfundidos (Antognoni et al., 2021).  

Por esta razón, en muchas transfusiones se utiliza sangre procesada mediante 

filtración leucorreductora, lo que implica la eliminación de la mayoría de los 



 

 
17 

 

leucocitos antes de la transfusión. Este procedimiento reduce significativamente el 

riesgo de reacciones adversas, mejora la compatibilidad entre el donante y el 

receptor, y asegura un mejor resultado clínico. Sin embargo, incluso con medidas 

preventivas, es fundamental realizar pruebas de compatibilidad cruzada y 

monitorear estrechamente al receptor durante y después de la transfusión (Sánchez 

et al., 2021).  

Los leucocitos, conocidos también como glóbulos blancos, son células móviles 

esenciales del sistema inmunitario encargadas de proteger al organismo frente a 

infecciones, agentes extraños y enfermedades. Estas células se dividen en dos 

grandes categorías: 

• Granulocitos: Incluyen a los neutrófilos, responsables de la fagocitosis y 

defensa contra bacterias; los eosinófilos, que participan en la respuesta 

contra parásitos y reacciones alérgicas; y los basófilos, involucrados en la 

liberación de histamina y en la respuesta inflamatoria (Erdem et al., 2022). 

• Agranulocitos: Comprenden a los monocitos, que se transforman en 

macrófagos para eliminar patógenos y desechos celulares, y a los linfocitos, 

los cuales desempeñan funciones clave en la inmunidad específica, como la 

producción de anticuerpos y la destrucción de células.  

En la citología de los leucocitos, se pueden identificar las características específicas 

de cada tipo de glóbulo blanco, lo que permite evaluar su morfología y función; 

• Neutrofilos: Poseen un núcleo segmentado (de 3 a 5 lóbulos) y un 

citoplasma ligeramente rosado con gránulos finos que suelen ser difíciles de 

visualizar, tiene un taño de 12 µm, alteraciones comunes: Neutrófilos 

inmaduros (bandas) en infecciones bacterianas severas o inflamaciones 

(desviación a la izquierda). Toxicidad celular (cuerpos de Döhle, 

vacuolización, basofilia citoplasmática) (Gardner et al., 2022). 

• Eosinófilos: Morfología: Tienen un núcleo bilobulado y un citoplasma con 

gránulos grandes, redondos o ligeramente ovalados, de color anaranjado 

brillante, tiene un tamaño de 10 a 12 µm. Alteraciones comunes: Se 



 

 
18 

 

observan aumentos en casos de alergias, infecciones parasitarias o 

enfermedades inmunes (Lippi et al., 2022). 

• Basófilos: Morfología: Núcleo irregular o en forma de S, y citoplasma con 

gránulos azulados o púrpura (aunque en los los gránulos pueden ser menos 

prominentes que en otras especies), tiene un tamaño de 8 a 10 µm. 

Alteraciones comunes: Se asocian con inflamaciones crónicas, reacciones 

alérgicas graves o parasitosis (Raskin et al., 2023).  

• Monocitos: Morfología: Citoplasma amplio, de color azul grisáceo, que a 

menudo contiene vacuolas, 12 a 17 µm. Alteraciones comunes: aumentan 

en infecciones crónicas, inflamaciones y neoplasias (Overmann, 2020). 

• Linfocitos: Son más pequeños que los monocitos, con un núcleo redondeado 

y un citoplasma escaso de color azul claro, tiene un tamaño de 8 a 10 µm. 

Alteraciones comunes: Linfocitos reactivos (células más grandes con 

citoplasma basófilo) en respuesta a infecciones virales o vacunaciones 

recientes. Linfoblastos (linfocitos inmaduros grandes) pueden aparecer en 

linfomas o leucemias (León et al., 2024). 

En una transfusión sanguínea, los leucocitos influyen molecularmente en la 

respuesta inmunitaria del receptor al liberar citoquinas proinflamatorias como IL-

1, IL-6 y TNF-α, lo que puede desencadenar una inflamación, los antígenos en sus 

membranas (Complejo Mayor de Histocompatibilidad) (Barger & MacNeil, 2024).  

2.3.10. Plaquetas 

Las plaquetas juegan un papel fundamental en la hemostasia y en la prevención de 

hemorragias, especialmente en situaciones de emergencia donde el receptor 

presenta deficiencias en la cantidad o función plaquetaria (Rich et al., 2021).  

Durante la transfusión, las plaquetas transfundidas contribuyen a restaurar la 

capacidad de coagulación del receptor, ayudando a formar un tapón plaquetario en 

sitios de lesión vascular y promoviendo la formación de un coágulo estable para 

detener el sangrado. Sin embargo, las plaquetas también pueden desempeñar un 

papel en las reacciones adversas, como la activación del sistema inmunológico del 



 

 
19 

 

receptor si se presentan incompatibilidades entre los antígenos plaquetarios del 

donante y receptor (Fariña et al., 2020).  

En este contexto, pueden desencadenarse reacciones como la trombocitopatía 

(disfunción plaquetaria) o la formación de trombos. Además, si las plaquetas 

transfundidas son de mala calidad o se almacenan inapropiadamente, pueden perder 

su funcionalidad, reduciendo la eficacia de la transfusión: 

• Plaquetas: En gatos, las plaquetas presentan dimensiones variables de 2 a 6 

micras de diámetro, con un grosor de 0.5 micras y un volumen plaquetario 

medio (VPM) de 8.5-13.2 femtolitros. Pueden presentar morfología de 

tamaño normal o alterado, pero con una funcionalidad deficiente 

caracterizada por la incapacidad de formar agregados plaquetarios adecuados 

durante la respuesta a lesiones vasculares. Causas: Se asocia con defectos 

genéticos o adquiridos en la función plaquetaria, como en la enfermedad de 

von Willebrand o la trombopatía hereditaria (Ormaza et al., 2021).  

• Plaquetas gigantes: Morfología: Plaquetas mucho más grandes de lo normal 

(megacariocitos de gran tamaño). Son una señal de que la médula ósea está 

aumentando la producción de plaquetas para compensar su pérdida o 

disfunción (Cuadros et al., 2021).  

• Plaquetas agranulares: Morfología: Plaquetas que carecen de los gránulos 

normales en su citoplasma. Los gránulos contienen proteínas necesarias para 

la hemostasia, y su ausencia puede afectar la capacidad de la plaqueta para 

formar coágulos. 

• Agregados plaquetarios anormales: Morfología: Plaquetas que forman 

grandes grupos o agregados, lo cual puede indicar una activación excesiva o 

inapropiada de las plaquetas. Esto puede generar una tendencia a formar 

coágulos, lo que a su vez aumenta el riesgo.  

• Plaquetas con vacuolas: Morfología: Plaquetas con vacuolas en el citoplasma, 

lo que indica un posible proceso de daño intracelular (Cuadros et al., 2021). 



 

 
20 

 

2.4. Sólidos totales 

La determinación de los sólidos totales sanguíneas constituye uno de los parámetros 

bioquímicos más relevantes en medicina veterinaria, proporcionando información 

valiosa sobre el estado metabólico, nutricional e inmunológico del paciente felino, 

los sólidos totales desempeñan funciones esenciales que incluyen el mantenimiento 

de la presión oncótica, el transporte de sustancias, la coagulación sanguínea y la 

respuesta inmunitaria. En el contexto específico de medicina transfusional felina, 

la evaluación de los sólidos totales adquiere una importancia crítica, ya que permite 

determinar no solo la aptitud del donante sino también la necesidad específica del 

receptor, optimizando así la seguridad y eficacia de los procedimientos 

transfusionales (Sakundech & Aengwanich, 2021). 

La medición de los sólidos totales refleja directamente la capacidad de síntesis 

hepática, el estado de hidratación del animal, la función renal e intestinal, y la 

presencia de procesos inflamatorios o infecciosos. En gatos, donde las 

enfermedades hepáticas, renales y los trastornos gastrointestinales son 

relativamente frecuentes, este parámetro proporciona una herramienta diagnóstica 

fundamental para la evaluación integral del estado de salud. Además, las 

alteraciones en las concentraciones de proteínas totales pueden indicar la presencia 

de enfermedades sistémicas subyacentes que podrían contraindicar procedimientos 

transfusionales o requerir manejo específico (Donaldson et al., 2020).  

2.4.1. Refractómetro como método de determinación de sólidos totales 

La refractometría representa el método más práctico, rápido y confiable para la 

determinación de proteínas totales en el ámbito clínico veterinario, especialmente 

en consultorios y clínicas con recursos limitados. Esta técnica se basa en el principio 

físico de que las soluciones con mayor concentración de solutos presentan un índice 

de refracción superior, estableciendo una correlación directa entre la concentración 

de proteínas y el grado de refracción de la luz que atraviesa la muestra de plasma o 

suero. La simplicidad del procedimiento, que requiere únicamente una gota de 

plasma y un refractómetro manual, la convierte en una herramienta ideal para 

obtener resultados inmediatos en situaciones clínicas donde la rapidez diagnóstica 

es esencial (Bunnell et al., 2023). 



 

 
21 

 

El refractómetro veterinario está específicamente calibrado para proporcionar 

lecturas directas en gramos por decilitro (g/dl), eliminando la necesidad de cálculos 

complejos o factores de conversión. Esta característica técnica permite que personal 

veterinario con entrenamiento básico pueda realizar determinaciones precisas y 

confiables, democratizando el acceso a esta información diagnóstica crucial. La 

portabilidad del equipo facilita su uso tanto en consulta ambulatoria como en 

servicios de emergencia, donde la evaluación inmediata del estado proteico puede 

influir decisivamente en las decisiones terapéuticas (Gieger et al., 2025). 

2.5. Grupos sanguíneos en gatos 

Los grupos sanguíneos en gatos fueron descubiertos por el veterinario Landsteiner 

y su colega Weiner en 1940, aunque los estudios relacionados con los grupos 

sanguíneos felinos empezaron a desarrollarse a mediados del siglo XX. Al igual 

que en los humanos, Landsteiner fue fundamental en el estudio de la tipificación 

sanguínea, pero en este caso, su trabajo en los gatos condujo al descubrimiento de 

los tres principales grupos sanguíneos: A, B y AB. La identificación de estos grupos 

fue un avance significativo para la medicina veterinaria, ya que permitió desarrollar 

prácticas seguras de transfusión y manejo de la salud (Ebelt et al., 2020). 

Los gatos tienen tres grupos sanguíneos principales: A, B y AB. El grupo A es el 

más común, especialmente en gatos de razas europeas y americanas. El grupo B es 

más frecuente en ciertas razas, como los gatos británicos y los gatos persas, mientras 

que el grupo AB es raro y se encuentra en una pequeña porción de gatos de 

diferentes razas. Cada uno de estos grupos sanguíneos posee anticuerpos naturales 

que pueden causar reacciones inmunológicas si se transfunde sangre incompatible. 

Por ejemplo, los gatos con sangre tipo A tienen anticuerpos contra el tipo B, y 

viceversa, lo que puede generar reacciones hemolíticas graves si no se toman las 

precauciones adecuadas durante las transfusiones (Holland et al., 2024).  

2.5.1. Antígeno A 

El grupo sanguíneo A se caracteriza por la presencia de un determinado patrón de 

azúcares en la cadena de carbohidratos, específicamente la presencia del azúcar N-

acetilgalactosamina. Este antígeno es reconocido por el sistema inmunológico de 

los gatos con grupo sanguíneo B, quienes tienen anticuerpos naturales contra el 



 

 
22 

 

antígeno A. La exposición a sangre tipo A en gatos tipo B puede generar una 

reacción inmunitaria severa, ya que los anticuerpos anti-A atacan y destruyen los 

glóbulos rojos transfundidos, causando hemólisis (Prasertsincharoen & 

Metheenukul, 2020). 

Molecularmente, la variabilidad en los grupos sanguíneos de los gatos se debe a la 

expresión diferencial de enzimas como la galactosiltransferasa y la 

glucosiltransferasa, que modifican las cadenas de carbohidratos en los glóbulos 

rojos. Los gatos con grupo A tienen una mayor expresión de galactosiltransferasa, 

mientras que aquellos con grupo B tienen una mayor concentración de anticuerpos 

naturales contra este tipo de antígeno. Además, los gatos con grupo AB poseen 

ambos tipos de antígenos A y B en su superficie celular, lo que los hace más 

universales en cuanto a la recepción de sangre, pero más vulnerables a ciertas 

reacciones si se transfunde sangre incompatible (Prasertsincharoen & Metheenukul, 

2020). 

El grupo sanguíneo A es el más común entre los gatos en muchas razas, 

especialmente en felinos de Europa y América del Norte. Sin embargo, el tipo A es 

mucho más prevalente en algunas razas y regiones, mientras que el tipo B es común 

en razas específicas como el British Shorthair y el Persa. El conocimiento sobre la 

presencia del antígeno A en los gatos es crucial para evitar complicaciones durante 

las transfusiones de sangre, ya que la incompatibilidad sanguínea entre estos grupos 

puede ser fatal si no se tiene cuidado (Prasertsincharoen & Metheenukul, 2020). 

2.5.2. Antígeno B 

El antígeno B en los gatos está compuesto por una estructura de carbohidratos 

específicos que se encuentran en los glóbulos rojos de los gatos del grupo sanguíneo 

B. Esta estructura de carbohidratos es un oligosacárido en la membrana celular de 

los eritrocitos, y se caracteriza por la presencia de galactosa en su cadena de azúcar, 

la cual es añadida por una enzima llamada galactosiltransferasa. En los gatos que 

tienen el grupo sanguíneo B, esta enzima actúa predominantemente sobre la cadena 

de carbohidratos (Ebelt et al., 2020). 

Molecularmente, el reconocimiento del antígeno B es clave en la tipificación 

sanguínea felina. Los gatos con sangre tipo B tienen un sistema inmunológico 



 

 
23 

 

preparado para reaccionar contra el antígeno A debido a la presencia de anticuerpos 

naturales en su suero, lo que los hace más vulnerables a reacciones transfusionales 

si no se realiza una tipificación sanguínea (Proverbio et al., 2020). 

2.5.3. Antígeno AB 

El antígeno AB en los gatos es una combinación de dos antígenos diferentes: A y 

B, que se encuentran en la superficie de los glóbulos rojos. Los gatos con grupo 

sanguíneo AB expresan tanto el antígeno A como el antígeno B en sus células 

sanguíneas, lo que les permite recibir transfusiones de sangre tanto tipo A como 

tipo B sin que se produzca una reacción hemolítica. Molecularmente, esto se debe 

a la presencia de ambos tipos de azúcares en la superficie de los eritrocitos: la N-

acetilgalactosamina para el antígeno A y la galactosa para el antígeno B (Proverbio 

et al., 2020). 

El grupo AB es raro en gatos, y su presencia significa que el animal tiene una mayor 

flexibilidad para recibir sangre de cualquier otro grupo sanguíneo, lo que lo hace 

un tipo de sangre "universal" en cuanto a la recepción. Sin embargo, este tipo de 

sangre también implica que el sistema inmunológico de los gatos con grupo AB no 

tiene anticuerpos naturales contra los antígenos A o B, lo que los hace más 

susceptibles a la transmisión de anticuerpos si son expuestos a sangre incompatible. 

Este fenómeno hace que la tipificación sanguínea sea aún más crítica para evitar 

reacciones transfusionales no deseadas, a pesar de la aparente universalidad en la 

recepción de sangre (Ebelt et al., 2020). 

2.6. Tipificación sanguínea en gatos 

La tipificación de los grupos sanguíneos es crucial para garantizar la seguridad en 

las transfusiones sanguíneas. Al identificar correctamente los antígenos en los 

glóbulos rojos, como A, B , y AB, se pueden prevenir reacciones inmunológicas 

graves que podrían ocurrir si un gato recibe sangre incompatible. Esto es 

especialmente importante en situaciones de emergencia, donde la transfusión rápida 

es necesaria. Además, la tipificación sanguínea ayuda a evitar la sensibilización 

inmunológica a largo plazo, lo que podría complicar futuras transfusiones 

(Wardrop, 2022). 



 

 
24 

 

Cuando un gato recibe sangre incompatible, el sistema inmunológico puede 

reconocer los glóbulos rojos transfundidos como extraños debido a la presencia de 

antígenos diferentes. Esto provoca una respuesta inmune, donde el cuerpo del 

receptor produce anticuerpos contra los antígenos del donante. El resultado es la 

activación del sistema del complemento, que lleva a la destrucción de los glóbulos 

rojos transfundidos (hemólisis), liberando hemoglobina en el torrente sanguíneo, 

las reacciones adversas (Wardrop, 2022). 

La tipificación sanguínea en gatos se realiza mediante pruebas serológicas para 

identificar los antígenos presentes en sus glóbulos rojos. Generalmente, se utilizan 

reactivos específicos que reconocen los antígenos A, B y AB. Los métodos incluyen 

pruebas de aglutinación, donde se observa si los anticuerpos en el suero del receptor 

reaccionan con los glóbulos rojos del donante. Esto permite determinar la 

compatibilidad sanguínea y evitar reacciones inmunológicas graves durante las 

transfusiones (Wardrop, 2022). 

2.6.1. Anticuerpos naturales que considerar en la tipificación sanguínea 

En los gatos domésticos, la presencia de anticuerpos naturales contra los grupos 

sanguíneos es un aspecto distintivo y clínicamente relevante del sistema 

inmunohematológico felino. A diferencia de los perros, que no suelen desarrollar 

anticuerpos naturales contra grupos sanguíneos distintos al suyo sin exposición 

previa (por ejemplo, por transfusión), los gatos sí los poseen de forma innata, 

incluso sin haber sido transfundidos. Esto convierte a la especie felina en un caso 

especial dentro de la medicina transfusional veterinaria (Petrone, 2024). 

Los gatos con sangre tipo A pueden tener anticuerpos anti-B en baja concentración, 

generalmente de baja afinidad y pobre capacidad hemolítica. En cambio, los gatos 

tipo B presentan anticuerpos anti-A altamente reactivos, que pueden causar 

hemólisis severa si se exponen a sangre tipo A, ya sea por transfusión o por 

transferencia pasiva de anticuerpos a través del calostro en la lactancia. Estos 

anticuerpos son de clase IgM, muy eficientes en activar el complemento y provocar 

la destrucción masiva de eritrocitos tipo A (Gonzales et al., 2022). 

Este fenómeno inmunológico da lugar a una entidad clínica conocida como 

isoeritrolisis neonatal felina, una condición potencialmente letal que ocurre cuando 



 

 
25 

 

una gata tipo B se aparea con un macho tipo A o AB, dando lugar a gatitos tipo A 

o AB. Al nacer, los gatitos heredan su tipo sanguíneo del padre o de ambos 

progenitores, y si son tipo A o AB, su sistema inmunológico inmaduro no es capaz 

de reconocer los anticuerpos maternos presentes en el calostro como extraños 

(Taylor et al., 2021).  

Los signos clínicos de isoeritrolisis neonatal pueden presentarse dentro de las 

primeras 6 a 72 horas de vida e incluyen: letargo, palidez de mucosas, ictericia, 

hemoglobinuria, orina oscura, taquipnea, debilidad, necrosis de la cola distal, y en 

casos graves, muerte súbita. La necrosis de la cola es un signo tardío clásico debido 

a trombosis vascular por agregación eritrocitaria (Taylor et al., 2021). 

2.6.2. Ventajas y desventajas de la tipificación sanguínea en gatos 

Entre las ventajas más importantes, destaca la prevención de reacciones 

transfusionales agudas. A diferencia de otras especies, los gatos tienen anticuerpos 

naturales contra antígenos eritrocitarios que no poseen, lo que significa que pueden 

sufrir reacciones inmunológicas severas incluso en su primera transfusión si no se 

realiza una tipificación previa. Este procedimiento sencillo permite determinar si 

un gato es del grupo A, B o AB, y así seleccionar adecuadamente un donante 

compatible (Barker, 2024). 

Otra ventaja clave es la prevención de la isoeritrolisis neonatal felina, una condición 

inmunomediada que ocurre cuando una gata tipo B (con anticuerpos anti-A 

naturales) tiene gatitos tipo A o AB, lo que puede desencadenar una hemólisis 

severa al ingerir el calostro materno. Con la tipificación sanguínea de ambos padres, 

es posible anticipar este riesgo y tomar medidas preventivas como la separación 

neonatal temporal o la selección genética de parejas compatibles (Boes et al., 2022). 

Además, la tipificación permite organizar de forma segura bancos de sangre felina, 

identificando donantes estables y adecuados según la prevalencia del grupo A o B 

en la región o raza. Esto mejora la disponibilidad de sangre compatible y reduce el 

riesgo de reacciones adversas, especialmente en razas con alta proporción del grupo 

B, como el Devon Rex, British Shorthair y Abisinio (Wadeerat et al., 2025). 

No obstante, la tipificación también presenta ciertas desventajas que deben tenerse 

en cuenta. Una de las principales limitaciones es el costo asociado a las pruebas 



 

 
26 

 

comerciales de tipificación, lo cual puede restringir su aplicación en clínicas de 

bajos recursos o en pacientes cuya condición crítica requiere intervención inmediata 

(Wadeerat et al., 2025). 

2.6.3. Importancia clínica de la tipificación sanguínea en gatos 

E n la práctica veterinaria, las transfusiones sanguíneas en gatos domésticos pueden 

ser necesarias de manera urgente para tratar condiciones como anemia hemolítica, 

hemorragias traumáticas o enfermedades crónicas. Sin embargo, la realización 

rápida y segura de una transfusión requiere conocer el grupo sanguíneo del paciente 

para evitar reacciones adversas que pueden poner en riesgo la vida del animal 

(Gavazza et al., 2021). 

La tipificación sanguínea es especialmente crucial en estas situaciones de 

emergencia porque los gatos poseen anticuerpos naturales contra antígenos 

eritrocitarios ausentes en su propio grupo, lo que puede provocar reacciones 

hemolíticas graves incluso en la primera transfusión si no se garantiza 

compatibilidad. En un contexto donde el tiempo es limitado, disponer de pruebas 

rápidas y confiables para determinar el grupo sanguíneo permite tomar decisiones 

clínicas acertadas y disminuir la mortalidad asociada a transfusiones incompatibles 

(Sangkaew et al., 2021). 

Además, la tipificación en emergencias ayuda a seleccionar adecuadamente 

donantes compatibles en bancos de sangre o a encontrar donantes vivos, reduciendo 

así el riesgo de rechazo inmunológico y complicaciones secundarias. La 

disponibilidad de pruebas portátiles y kits de tipificación comercial ha facilitado su 

implementación en clínicas veterinarias de distintos niveles, promoviendo un 

manejo transfusional más seguro y eficiente (Uno et al., 2021). 

2.6.4. Pruebas para el diagnóstico del grupo sanguínea en gatos 

Existen varios métodos disponibles para la tipificación sanguínea en gatos, los 

cuales pueden clasificarse en pruebas serológicas (que detectan antígenos en la 

superficie del eritrocito mediante aglutinación) y pruebas moleculares (que 

identifican los genes responsables de los antígenos). La elección del método 

depende del contexto clínico, la disponibilidad de equipos (Spada et al., 2022). 



 

 
27 

 

Uno de los métodos más comunes en clínica es la tipificación mediante aglutinación 

directa en tarjeta. Este procedimiento utiliza tarjetas comerciales que contienen 

reactivos específicos para detectar los antígenos A y B. Se aplica una gota de sangre 

anticoagulada (con EDTA) en los pocillos de la tarjeta que contienen los reactivos 

anti-A y anti-B. La presencia de aglutinación indica la expresión del antígeno 

correspondiente: si hay aglutinación solo en el pocillo anti-A, el gato es tipo A; si 

se observa aglutinación con el anti-B, es tipo B; y si hay aglutinación en ambos, es 

tipo AB. Esta prueba es rápida (resultados en menos de 5 minutos), sencilla y útil 

en situaciones de emergencia o práctica de campo. Sin embargo, puede presentar 

interferencias en casos de autoaglutinación, hemólisis o lipemia, por lo que su 

interpretación debe realizarse con precaución (Wadeerat et al., 2025). 

Otro método confiable es la aglutinación en tubo, considerada una prueba de 

referencia en laboratorios especializados. En esta técnica, los glóbulos rojos del 

paciente se incuban con antisueros específicos en tubos de ensayo, permitiendo 

observar aglutinaciones con mayor sensibilidad y especificidad. Aunque es más 

precisa que la tarjeta, requiere condiciones de laboratorio, centrifugación y personal 

capacitado, por lo que su uso está limitado a entornos (Wadeerat et al., 2025). 

Las pruebas de microcolumnas o tarjetas de gel también se han adaptado para 

felinos. Este método utiliza una tarjeta con microtubos de gel que contienen 

reactivos específicos. Los eritrocitos se mezclan con los reactivos y luego se 

centrifugan. Si hay aglutinación, los eritrocitos quedarán atrapados en el gel; si no 

hay reacción, los glóbulos rojos pasarán libremente (Binvel et al., 2021). 

Además de los métodos serológicos, existen las técnicas moleculares de 

tipificación, como la PCR (reacción en cadena de la polimerasa), que identifican 

directamente los alelos responsables de los antígenos A y B. Estas pruebas son 

útiles en la investigación genética (Silvestre & Pastor, 2021).  

2.6.5. Técnica inmunocromatográfica de tipificación sanguínea  

La técnica inmunocromatográfica de tipificación sanguínea en gatos es un método 

rápido y eficiente utilizado para determinar el grupo sanguíneo de un gato. Esta 

técnica emplea un sustrato en el que se aplican anticuerpos específicos contra los 

antígenos sanguíneos. Si los antígenos presentes en la sangre del gato reaccionan 



 

 
28 

 

con los anticuerpos, se produce una coloración visible, lo que permite identificar el 

tipo sanguíneo de manera sencilla y confiable (Santos et al., 2020).  

El procedimiento usa anticuerpos inmovilizados en una tira de prueba, que se unen 

a los antígenos presentes en los glóbulos rojos. Si el antígeno está presente, se 

produce una reacción visible, generalmente una coloración. Esta reacción es debido 

a la acumulación de partículas que se unen a los anticuerpos (Santos et al., 2020). 

Es rápida, sencilla y no requiere equipo especializado costoso. La interpretación de 

los resultados es visual, lo que facilita su uso en clínicas y hospitales veterinarios. 

Además, es una técnica de bajo costo, no invasiva y proporciona resultados 

confiables en poco tiempo, lo que permite una mejor preparación para realizar 

transfusiones seguras y evitar reacciones adversas (Santos et al., 2020). 

2.6.6. Crossamatching en gatos 

Se basa en una tecnología, que incorpora una membrana una antiglobulina felina 

especifica que detectará la presencia de inmunoglobulina (IgG e IgM) y/o 

componente C2 que se unen a la superficie de los eritrocitos (Alvedia, 2024).  

2.7. Importancia de la citología en la tipificación sanguínea 

La citología sanguínea desempeña un papel fundamental en la tipificación 

sanguínea en gatos, ya que proporciona información crucial sobre la salud general 

del animal y las características de sus glóbulos rojos. Antes de realizar una 

transfusión sanguínea, es esencial evaluar la muestra de sangre del gato para 

asegurarse de que no haya anomalías que puedan afectar la respuesta inmune 

durante la transfusión. Esta evaluación ayuda a identificar problemas como la 

anemia, infecciones o enfermedades que puedan interferir con la compatibilidad de 

la sangre (Pinzón et al., 2023). 

En la tipificación sanguínea, la citología permite examinar la morfología de los 

glóbulos rojos y detectar posibles cambios relacionados con la presencia de 

anticuerpos o antígenos que podrían causar reacciones adversas. Si el gato presenta 

características atípicas en sus glóbulos rojos, como la presencia de anticuerpos 

contra antígenos específicos, esto podría indicar incompatibilidades entre el 



 

 
29 

 

donante y el receptor, lo que aumentaría el riesgo de una reacción transfusional 

grave (Pinzón et al., 2023). 

2.7.1. Pasos para realizar una citología sanguínea 

2.7.1.1. Preparación de la muestra y tinción 

Una vez obtenida la muestra citológica, esta debe transferirse cuidadosamente a un 

portaobjetos, evitando la contaminación con queratinocitos. Para este proceso, se 

puede utilizar una jeringa de 10-12 ml que contenga entre 6 y 8 ml de aire. La 

jeringa se conecta a la aguja con la muestra y se expulsa el aire de manera 

controlada, depositando una sola gota de material (Pinzón et al., 2023). 

Es fundamental mantener un control preciso durante este paso, ya que un exceso de 

material puede resultar en una preparación demasiado densa. Las preparaciones 

espesas son difíciles de evaluar debido a una tinción inadecuada, la pérdida de 

visibilidad de células individuales y el riesgo de daño celular por presión excesiva 

al extender la muestra (Tangarife & Montoya, 2023). 

La preparación del portaobjetos busca crear una monocapa celular intacta para 

facilitar la tinción y una óptima citomorfología. Esto se logra deslizando dos 

portaobjetos en ángulo recto sobre una gota de muestra, extendiéndola 

uniformemente sin presionar excesivamente(Saavedra & Arrieta, 2024). 

La técnica del frotis sanguíneo es más adecuada para las muestras serosas o 

líquidas. Este método es similar a la preparación de frotis de sangre. Para empezar, 

se coloca un portaobjetos limpio sobre una superficie estable y dura; se deposita 

una gota de la muestra en un extremo del portaobjetos; y se dirige un segundo 

portaobjetos a un tercio de la muestra en un ángulo de 45° (Murillo, 2023). 

Una vez creado el panel de observación citológica en el portaobjetos, debe dejarse 

secar durante uno o dos minutos como mínimo. No se recomienda la aplicación 

directa de calor, especialmente con una llama abierta, debido a la distribución 

desigual del calor, la deformación celular y el riesgo de lesiones. Una vez secos los 

portaobjetos, debe teñirse un portaobjetos representativo y evaluarse la celularidad 

adecuada (Pantanowitz, 2020).  



 

 
30 

 

Diff-Quik es una tinción de Romanowsky modificada fácilmente disponible, en 

general, se considera una tinción fiable para frotis de cribado y la mayoría de las 

aplicaciones diagnósticas (Pantanowitz, 2020).  

2.7.1.2. Ventajas de las tinciones tipo Romanowsky 

Las tinciones de tipo Romanowsky proporcionan excelentes detalles 

citoplasmáticos, incluida la tinción diferencial de gránulos citoplasmáticos, 

vacuolas y otras estructuras citoplasmáticas, la tinción se utiliza para la 

identificación de ciertas neoplasias (por ejemplo, tiroides, linfocitos granulares 

grandes, mastocitos) y Para la clasificación de leucocitos, las tinciones tipo 

Romanowsky son útiles en la interpretación tanto de neoplasia como de 

inflamación. Las células plasmáticas, con su citoplasma azul oscuro rico en ARNm 

y su zona de Golgi azul pálido pobre en ARNm (Mittal, 2024).  

2.7.1.3. Desventajas de las tinciones Romanowsky 

Las tinciones de tipo Romanowsky no son semitransparentes y, por lo tanto, las 

partículas o el material de tejido más gruesos pueden ser difíciles de interpretar. 

Esto puede dificultar el diagnóstico de neoplasia porque dicho diagnóstico es de 

gran ayuda al evaluar la relación arquitectónica entre las células en partículas más 

gruesas. Sin embargo, estos fragmentos de tejido más gruesos y áreas más gruesas 

del frotis generalmente se tiñen de manera demasiado oscura cuando se utiliza una 

tinción de tipo Romanowsky (Kalinin et al., 2024). 

2.7.1.4. Tinción Nuevo Azul de Metileno 

NMB es una tinción técnicamente simple que tiene las ventajas de ser rápida, 

semitransparente (lo que permite la evaluación de fragmentos de tejido más 

gruesos) y útil para ilustrar la cromatina y los detalles nucleolares. NMB es un tinte 

azul monocromático que también tiñe bacterias y hongos. No se utiliza alcohol y, 

por lo tanto, las gotas de grasa y los cristales de colesterol son visibles. La NMB 

también se puede utilizar para evaluar el sedimento de orina (Enos & Moore, 2022). 



 

 
31 

 

CAPÍTULO III 

3. MARCO METODOLÓGICO 

3.1. Ubicación y características de la investigación 

• Localización del experimento 

La presente investigación se realizó en las instalaciones de la Clínica Veterinaria 

de la Universidad Estatal de Bolívar, ubicada en el campus Laguacoto de la 

Facultad de Ciencias Agropecuaria Recursos Naturales y del Ambiente, en la vía 

Guaranda San Simón kilómetro 11/2 en el sector de Laguacoto II.  

• Situación geográfica y edafoclimática 

Parámetro Localidad 

Altitud 2605 msnm 

Latitud 1°36'38"S 

Longitud 78°59'52"W 

Temperatura máxima 26º C 

Temperatura mínima  9º C 

Precipitación media anual 120 mm3 

Humedad relativa (%) 80 % 

Fuente: (Estación Meteorológica Laguacoto II, 2020). 

 

• Zona de vida 

De acuerdo con la sistematización de zonas de vida de Leslie Holdridge, el cantón 

Guaranda pertenece a la formación, de bosque húmedo montano bajo (bhmb) 

(Holdridge, 1967). 



 

 
32 

 

3.2. Metodología 

3.2.1. Material en estudio 

•  40 gatos 

3.2.2. Factores en estudio 

Factor A: Gatos 

Factor B: Grupo sanguíneo (Antígeno) 

b1: Antígeno A 

b2: Antígeno B 

b3: Antígeno AB 

Tabla 2.  

Descripción técnica del ensayo 

Número Valor 

Numero de gatos 40 

Número de kit de tipificación 40 

 

3.2.3. Tipo de diseño experimental 

• Se aplicó estadística descriptiva, considerando tablas y gráficos de 

frecuencia y porcentaje de datos de las variables cuantitativas y cualitativas, 

además, dentro de las variables cuantitativas se utilizó estadígrafos de tendencia 

central (media, rango inter-cuartil) de los resultados. 

3.2.4. Manejo de la investigación 

• Obtención de los pacientes 

Para la selección de los pacientes se realizó la divulgación de información mediante 

afiches informativos en redes sociales, además, se distribuyeron en la cuidad de 

Guaranda, se obtuvieron 40 gatos con al menos 6 meses de edad. 



 

 
33 

 

• Historia clínica: 

Se ejecutaron mediante el llenado de la información de la historia clínica, donde se 

obtuvieron los datos relacionados al propietario, así como número de cedula, 

dirección, teléfonos celular y dirección, además, se obtuvieron los datos del 

paciente como, nombre, edad, raza sexo, calendario de vacunación. 

• Anamnesis 

La respectiva anamnesis a los tutores de cada uno de los pacientes se realizó para 

la obtención de la información como; historial de enfermedades, calendario de 

vacunación, además se realizó la socialización de los procedimientos.  

• Semiología del paciente 

• Observación  

Los 40 paciente en estudio fueron sometidos a una observación clínica, la cual 

permitió definir las condiciones físicas perceptibles a simple vista, las mismas que 

registraron en la historia clínica.  

• Inspección clínica:  

Se realizó la inspección de las constantes fisiológicas, como la frecuencia cardiaca, 

frecuencia respiratoria, tiempo de llenado capilar, temperatura, condición corporal, 

sexo, estado reproductivo, patologías, etc.  

• Palpación 

Para la obtención de este dato se estipuló los procesos semiológicos, comenzando 

desde las extremidades hasta la región proximal de los miembros. Además, se llevó 

a cabo la palpación de los sistemas orgánicos correspondientes, con el fin de 

identificar posibles anormalidades o signos clínicos relevantes.  

• Auscultación  

Con el uso de un fonendoscopio, se efectuó la auscultación de los campos 

pulmonares y cardiacos de los pacientes en estudio. Esta técnica permitió evaluar 

las condiciones respiratorias y cardiacas, facilitando la detección y la exclusión de 

enfermedades cardiacas y respiratorias.  



 

 
34 

 

• Manejo del paciente 

• Extracción de la muestra:  

Se extrajo 0,5 ml de sangre de la vena cefálica, en tubos Vacutainer con 

anticoagulantes con ácido etilendiaminotetraacético (EDTA), el mismo que se 

ocuparon para los análisis hematológicos y la tipificación de los grupos sanguíneos 

de los pacientes, previamente se realizó un rasurado y desinfección de la zona. 

• Frotis sanguíneo:  

El estudio de las características morfológicas de las células sanguíneas de los 

pacientes se realizó mediante el empleo de un frotis sanguíneo con la ayuda de la 

tinción Diff-Quik, inicialmente, los extendidos sanguíneos previamente secos 

fueron fijados sumergiéndolos durante 10 segundos en el fijador metanol, 

asegurando la adecuada preservación de las estructuras celulares. Posteriormente, 

las láminas fueron trasladadas al colorante eosina (solución 1) donde 

permanecieron entre 5 y 10 segundos, permitiendo la tinción de los componentes 

citoplasmáticos. A continuación, los frotis se introdujeron en el colorante basófilo 

(solución 2) durante 5 a 10 segundos, con el fin de resaltar las estructuras nucleares 

y granulaciones basófilas. Entre cada paso, las láminas fueron escurridas 

suavemente para evitar la mezcla de reactivos. Finalmente, los portaobjetos se 

enjuagaron con agua destilada, se dejaron secar al aire en posición vertical y se 

conservaron para su posterior análisis microscópico. 

• Micro-hematocrito:  

Para la determinación del microhematocrito se empleó el método estándar de 

centrifugación en tubos capilares. Se recolectó una muestra de sangre con 

anticoagulante (EDTA) y, mediante capilar de microhematocrito, se llenó 

aproximadamente tres cuartas partes de su volumen. Posteriormente, un extremo 

del tubo fue sellado con masilla de sellado especial para evitar derrames durante la 

centrifugación. Los capilares preparados fueron colocados en la microcentrífuga de 

hematocrito en posición radial, con el extremo sellado hacia la periferia. La 

centrifugación se realizó a una velocidad de 10.000 a 12.000 rpm durante 5 minutos, 

permitiendo la separación de los componentes sanguíneos. 



 

 
35 

 

Finalizado el proceso, se retiraron los tubos y se procedió a la lectura en la regla 

lectora de hematocrito, alineando el extremo inferior de la columna de glóbulos 

rojos con el valor cero y el menisco superior del plasma con el 100%. El porcentaje 

de hematocrito se obtuvo directamente del límite superior de la capa eritrocitaria. 

Se registraron los valores obtenidos y se contrastaron con los rangos fisiológicos 

establecidos para la especie felina.  

• Proteínas totales  

Para la determinación de proteínas totales séricas se utilizó la técnica de 

refractometría. Se recolectó sangre venosa en tubos con anticoagulante (EDTA) y 

se sometió a centrifugación a 3.000 rpm durante 10 minutos, con el fin de obtener 

plasma libre de células. Una vez separado el plasma, se depositaron una o dos gotas 

en el prisma del refractómetro previamente calibrado con agua destilada. El prisma 

se cerró cuidadosamente para evitar la formación de burbujas y se procedió a la 

lectura directa en la escala de proteínas séricas (g/dL). 

• Tipificación sanguínea: 

Para la tipificación sanguínea felina se empleó el kit Easy Quick Test BT 

(Alvedia®) siguiendo las recomendaciones del fabricante. Se recolectaron 50 µL 

de sangre entera con anticoagulante (EDTA) de cada paciente y se depositaron 

directamente en el pocillo de dilución provisto en el kit. Posteriormente, la muestra 

fue homogeneizada suavemente y transferida a la tarjeta de ensayo que contenía las 

líneas reactivas específicas para la detección de los antígenos eritrocitarios A y B. 

La migración de la muestra ocurrió por capilaridad, permitiendo la reacción 

antígeno-anticuerpo con los reactivos incorporados en la membrana. La lectura de 

resultados se realizó de manera visual después de 2 minutos, identificando la 

presencia o ausencia de las bandas reactivas correspondientes a los grupos 

sanguíneos A, B o AB. 

3.2.5. Métodos de evaluación 

Raza: Variable que se desarrolló mediante la observación clínica de las 

características fenotipicas de cada gato, además, fue relacionado con la información 

proporcionada por el propietario en la historia clínica.  



 

 
36 

 

Sexo: Referencia que se obtuvo mediante la inspección clínica de las características 

reproductivas de los pacientes, observando los órganos reproductivos externos, y 

su valoración fue expresado como hembra o macho.  

Edad: Dato que se obtuvo por medio de la información proporcionada por el 

propietario en la anamnesis y fue correlacionada con la inspección de las piezas 

dentales de cada paciente, su valor fue expresado en años. 

Peso: Valor que se desarrolló mediante la medición del peso vivo con la ayuda de 

una balanza digital, su valor fue expresado en kilogramos.  

Estado reproductivo: Dato que se obtuvo en la anamnesis con el propietario, valor 

que fue expresado en pacientes enteros o esterilizados/castrados.  

Tipificación sanguínea: Variable que se desarrolló mediante la tipificación de los 

grupos sanguíneos en gatos, se categorizaron pacientes con los antígenos A, B y 

AB; además, para determinar la prevalencia se empleó la siguiente formula; 

Prevalencia = número de pacientes con un antígeno específico/ número de pacientes 

totales, este resultado se multiplico por 100 y fue expresado en porcentaje.  

Hematocrito: Valor que se desarrolló mediante la estimación manual del 

porcentaje del micro-hematocrito, contemplando la proporcionalidad de glóbulos 

rojos en relación con la tarjeta de medición, su valoración fue expresada en %.  

Sólidos totales: Dato que se obtuvo mediante refractometría, el cual proporcionó 

la cantidad de solidos totales que posee el plasma sanguíneo de cada paciente y su 

valor fue expresado en gramos/decilitro (gr/dL). 

Morfología celular: Variable que se valoró mediante la tinción y la observación 

microscópica de un frotis sanguíneo, se consideró las condiciones morfológicas de 

los eritrocitos, leucocitos y plaquetas. 

3.2.6. Análisis de datos 

Los datos obtenidos en la presente investigación fueron tabulados utilizando la 

plantilla de Microsoft Excel, en la cual se elaboraron tablas y gráficos de barras 

para la interpretación de las variables en estudio. Para las variables cuantitativas 

(peso, edad, hematocrito y sólidos totales) se estimó la media general y los rangos 

intercuartílicos mediante el paquete estadístico SAS versión 9.4. 



 

 
37 

 

CAPÍTULO IV 

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 

4.1. Interpretación de resultados  

4.1.1. Raza de los felinos  

Tabla 3.  

Análisis de la raza de los felinos en estudio  

Raza Frecuencia Porcentaje 

Mestizos 27 67,5% 

Carey 2 5% 

Turco Van 3 7,5% 

Maine Coon 2 5% 

Tortoiseshell 1 2,5% 

Angora Turco 1 2,5% 

Siames 3 7,5% 

British Shorthair 1 2,5% 

Total 40 100% 

 

Figura  1.  

Porcentaje de las razas de los felinos en estudio 

 

67,5%

5,0% 7,5% 5,0% 2,5% 2,5%
7,5%

2,5%

0,0%

10,0%

20,0%

30,0%

40,0%

50,0%

60,0%

70,0%

80,0%

90,0%

100,0%

RAZAS



 

 
38 

 

En la población estudiada, conformada por 40 felinos, la raza con mayor 

representación fue mestizo, con 27 individuos que corresponden al 67,5% del total. 

Le siguieron las razas Turco Van y Siamés, cada una con 3 individuos conformando 

el 7,5% de la población, mientras que las razas Carey y Maine Coon con un registro 

de 2 individuos cada una siendo el 5% de los animales estudiadoa. Finalmente, las 

razas Tortoiseshell, Angora Turco y British Shorthair se encontraron en menor 

proporción, con 1 individuo cada una, representando un 2,5% de los felinos, 

evidenciando una predominancia marcada de la raza Tabby frente al resto de las 

razas registradas. 

Anderson et al. (2022) realizaron un estudio Epidemiológico genético de variantes 

de tipos de sangre, enfermedades, rasgos, y diversidad genética en todo el genoma 

en más de 11.000 gatos domésticos, Según la determinación genética del tipo 

sanguíneo encontraron que el tipo A fue predominante en la mayoría de razas, 

mientras que el tipo B fue el más común en las siguientes cinco razas o grupos de 

razas con más de 15 individuos analizados: American Curl (40,4%), British 

Shorthair (20,3%), Cornish Rex (33%), Devon Rex (30,3%) y Havana Brown 

(20%). Además, las razas en las que el raro tipo sanguíneo AB estuvo presente con 

una frecuencia superior al 1% fueron European Shorthair (2,2%), Lykoi (1%), 

Scottish Fold (3,3%), RagaMuffin (3,4%), Ragdoll (2,2%) y Russian Blue (1,5%). 

Al comparar los resultados de Anderson y colaboradores, se observan diferencias 

apreciables, principalmente en el número de gatos incluidos en cada estudio, lo que 

condiciona la representación de las distintas razas felinas y explica las variaciones 

reportadas entre investigaciones. Además, en el presente estudio no se evidenció la 

existencia de antígenos sanguíneos B o AB. 

 

 

 

 

 

 



 

 
39 

 

4.1.2. Sexo de los felinos 

Tabla 4.  

Análisis del sexo de los felinos en estudio  

Sexo Frecuencia Porcentaje 

Machos 14 35% 

Hembras 26 65% 

Total 40 100% 

 

Figura  2.  

Porcentaje del sexo de los felinos en estudio 

 

En la población de 40 felinos estudiados, 26 individuos fueron hembras lo que 

correspondió al 65% del total, y 14 felinos fueron machos siendo el 35% de gatos 

en estudio, determinando una mayor representación de hembras en la población 

experimental. Dado que en todos los casos se identificó únicamente el grupo 

sanguíneo tipo A, no se evidenció asociación entre el sexo y la variabilidad del tipo 

sanguíneo, lo que sugiere que en esta población el sexo no constituyó un factor 

diferenciador en la distribución del grupo sanguíneo felino.  

Silvestre et al, (2025) en su estudio observacional sobre la distribución de los 

grupos sanguíneos de gatos en una población sin pedigrí en Luanda, Angola, de un 

total de 127 felinos estudiados, determinó que el 55,91% (n=71) de gatos fueron 

35,0%

65,0%

0,0%

10,0%

20,0%

30,0%

40,0%

50,0%

60,0%

70,0%

80,0%

90,0%

100,0%

Machos Hembras

SEXO



 

 
40 

 

machos y el 44,09% (n=56) fueron hembras, además, el 94.9% de los gatos fueron 

del grupo sanguíneo A, el 5.1% tipo B, y no se encontró ningún gato tipo C. 

Al comparar los resultados obtenidos en este estudio con los de Silvestre y 

colaboradores, se observan diferencias en la proporción de sexos incluidos en cada 

estudio, lo que condiciona la representación poblacional y explica las variaciones 

reportadas entre investigaciones. No obstante, en ambos ensayos se evidenció una 

clara predominancia del grupo sanguíneo A frente a otros grupos sanguíneos, con 

la particularidad de que en el presente estudio no se identificaron individuos con 

grupos B o AB. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 
41 

 

4.1.3. Edad de los felinos 

Tabla 5.  

Análisis de los grupos etarios de los felinos en estudio  

Edad Frecuencia Porcentaje Media IQR 

Cachorros 6 15% 

3,01 (1- 4) años 

Joven 12 30% 

Adulto 14 35% 

Geriátrico 8 20% 

Total 40 100% 

Cachorros: 0-6 meses. Jóvenes: 7 meses- 2 años. Adultos: 2,1 años – 5 años. Geriátrico: ≥ 5,1 años 

 

Figura  3.  

Porcentaje de los grupos etarios de los felinos en estudio 

 

En la población evaluada, la distribución etaria mostró que la mayoría de los felinos 

correspondieron al grupo adulto (35%; n=14), seguido por los jóvenes (30%; n=12), 

mientras que los geriátricos representaron el 20% (n=8) y los cachorros el 15% 

(n=6). Estos resultados reflejan una mayor proporción de individuos en etapas de 

madurez reproductiva y funcional (jóvenes y adultos en conjunto alcanzaron el 65% 

de la muestra), mientras que los extremos etarios (cachorros y geriátricos) tuvieron 

una representación menor (35%), con una media general de 3,01 años y un rango 

15%

30%
35%

20%

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

Cachorros Joven Adulto Geriátrico

EDAD



 

 
42 

 

Inter-cuartil desde 1 - 4 años. Dado que todos los felinos fueron clasificados como 

grupo sanguíneo A, no se evidenció asociación entre la edad y la variabilidad de los 

grupos sanguíneos, lo que indica que en esta población la edad no constituyó un 

factor determinante en la expresión fenotípica del sistema sanguíneo felino 

Spada et al. (2020) estudiaron la prevalencia de tipos sanguíneos y aloanticuerpos 

del sistema de grupos sanguíneos AB en gatos del norte (Lombardía) y sur (Sicilia) 

de Italia, el estudio fue realizado con 214 gatos, incluyendo machos y hembras, con 

grupos etarios tanto cachorros, jóvenes, adultos y geriátricos. En su investigación 

encontró que gatos jóvenes producen anticuerpos Anti-A entre 6 y 8 meses de edad, 

y que a los 3 meses los niveles de anticuerpos son comparables ya con los de un 

gato adulto con tipo B, y propuso la teoría de que la corta edad podría explicar la 

ausencia de aloanticuerpos contra el tipo A. Además, encontraron que el tipo 

sanguíneo A predominó ampliamente (alta proporción, aunque no 100%), seguido 

por los tipos B y AB en proporciones pequeñas.  

Al comparar los resultados obtenidos en este estudio con los de Spada y 

colaboradores, se observó similitud en la presencia de diversos grupos etarios 

(cachorros, jóvenes, adultos y geriátricos), sin embargo, a nivel de tipificación se 

demostró diferencias de investigación a investigación considerando que a 

diferencia del autor referenciado en este ensayo solamente se encontraron felinos 

del grupo sanguíneo A independientemente del grupo etario. 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 
43 

 

4.1.4. Peso de los felinos 

Tabla 6.  

Análisis del peso de los felinos en estudio  

Peso (kg) Frecuencia Porcentaje Media IQR 

1-3 15 37,5% 

3,49 (2,8 – 4,05) kg 
3,1-6 25 62,5% 

> 6 0 0% 

Total 40 100% 

 

Figura  4.  

Porcentaje de los intervalos del peso de los felinos en estudio 

 

En la población estudiada, la distribución del peso corporal mostró que el 62,5% de 

los felinos se concentraron en el rango de 3,1 a 6 kg (n=25), seguido por un 37,5%; 

de aquellos con un peso entre 1 y 3 kg (n=15), mientras que no se registraron 

individuos con peso superior a 6 kg (0%), con una media general de 3,49 kg y un 

rango inter-cuartil desde 2,8 – 4,05 kg. Estos resultados indican que la mayor 

proporción de animales se ubica en un rango considerado habitual para felinos 

domésticos de tamaño medio, mientras que los ejemplares más pequeños también 

tuvieron una representación significativa dentro de la población estudiada. 

37,50%

62,50%

0,00%
0,00%

10,00%

20,00%

30,00%

40,00%

50,00%

60,00%

70,00%

80,00%

90,00%

100,00%

1 a 3 kg 3,1 a 6 kg > 6 kg

PESO



 

 
44 

 

Petrone (2024) evaluó la tipificación de los grupos sanguíneos en gatos sin raza 

definida pertenecientes a una asociación benéfica en la ciudad de Guatemala. Se 

muestrearon 20 gatos, de los cuales el 100 % correspondió al grupo sanguíneo A. 

El peso corporal promedio fue de 2,64 kg, con valores mínimos y máximos de 0,5 

kg y 5,0 kg, respectivamente. El análisis estadístico determinó que no existió 

asociación entre el peso corporal y la expresión de un grupo sanguíneo en la 

población felina estudiada. 

Al comparar con los hallazgos de Petrone (2024), los resultados de este estudio 

muestran una tendencia similar, dado que en ambos estudios el 100 % de los gatos 

evaluados correspondieron al grupo sanguíneo tipo A y no se evidenció relación 

entre el peso corporal y la expresión del tipo sanguíneo. No obstante, se observó 

que el peso promedio difiere entre investigaciones, lo que refleja variaciones 

asociadas a las características propias de cada población estudiada. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 
45 

 

4.1.5. Estado reproductivo 

Tabla 7.  

Análisis del estado reproductivo de los felinos en estudio  

Sexo Frecuencia Porcentaje 

Entero/Entera 34 85% 

Castrado/Esterilizada 6 15% 

Total 40 100% 

 

Figura  5.  

Porcentaje del estado reproductivo de los felinos en estudio 

 

En la población evaluada, el 85% de los felinos se encontraban en estado 

reproductivo entero (n=34), mientras que únicamente el 15% había sido castrado o 

esterilizada (n=6). Estos resultados evidencian un predominio de individuos sin 

intervención quirúrgica sobre el aparato reproductor dentro de la muestra analizada.  

Tenorio & Taboada (2024) investigaron la tipificación sanguínea en gatos, se 

estudiaron 60 gatos, de los cuales el 46.7% fueron machos y el 53.3% hembras, 

además, el 90% (n=54) de los pacientes fueron esterilizados y solo 10% (n=6) 

permanecieron enteros, además, la prevalencia de los tipos sanguíneos en la 

población de estudio mostró un 86.7% de la población perteneciente al tipo A, un 

1.7% al tipo AB, y un 11.7% al tipo B, además, determinaron que no existe 

85%

15%

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

Entero/Entera Castrado/Esterilizada

ESTADO REPRODUCTIVO



 

 
46 

 

influencia estadística entre el estado reproductivo y el tipo de sangre en los felinos 

estudiados.  

Los resutlados de Tenorio & Taboada son diferentes a los hallazgos de este estudio, 

ya que, no existió evidencias de tipificación sanguínea diferente al tipo A. Sin 

embargo, los resultados tienden a ser similares en la proporcionalidad de animales 

con procedimiento de esterilización.  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 
47 

 

4.1.6. Tipificación sanguínea 

Tabla 8.  

Análisis de la tipificación de los felinos en estudio  

Antígeno Frecuencia Porcentaje 

A 40 100% 

B 0 0% 

AB 0 0% 

Total 40 100% 

 

Figura  6.  

Porcentaje de la tipificación de los felinos en estudio 

 

En la población evaluada, la totalidad de los felinos correspondió al grupo 

sanguíneo A (100%; n=40), sin registro de individuos con tipificación B o AB (0%). 

Estos resultados evidencian una homogeneidad absoluta en la expresión fenotípica 

del sistema sanguíneo felino dentro de la muestra analizada. 

Wadeerat et al. (2025) estudiaron la prevalencia de los grupos sanguíneos felinos 

en Bangkok y sus alrededores durante el periodo 2022-2024, utilizando la prueba 

inmunocromatográfica rápida en 114 gatos (76 Domestic Shorthairs y 38 de razas 

100,00%

0,00% 0,00%
0,00%

10,00%

20,00%

30,00%

40,00%

50,00%

60,00%

70,00%

80,00%

90,00%

100,00%

A B AB

Tipificación sanguínea



 

 
48 

 

puras pertenecientes a 10 razas). Los resultados mostraron que el tipo sanguíneo A 

fue el más frecuente (93,86%), mientras que los tipos B (3,51%) y AB (1,75%) 

fueron poco comunes; además, se reportó un caso con tipificación no identificada. 

Al contrastar los hallazgos de este estudio con los de Wadeerat y colaboradores, se 

observó que, si bien en ambos estudios el grupo sanguíneo A fue el predominante, 

en la población evaluada en este trabajo se alcanzó una homogeneidad absoluta 

(100%), sin registrarse individuos de los grupos B ni AB. En cambio, en la 

investigación realizada por el autor referenciado, el tipo A representó el 93,86%, 

coexistiendo con proporciones menores de los grupos B (3,51%) y AB (1,75%), 

además de un caso no tipificado. Estas diferencias podrían explicarse por la 

influencia de factores como la variabilidad genética, la composición racial de la 

muestra o las condiciones poblacionales específicas de cada región.  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 
49 

 

4.1.7. Hematocrito 

Tabla 9.  

Análisis del hematocrito de los felinos en estudio  

Referencial 

Hematocrito 
Frecuencia Porcentaje Media IQR 

<28 3 7,5% 

37% (35% - 40%) 
28-47 37 92,5% 

>47 0 0% 

Total 40 100% 

 

Figura  7.  

Porcentaje del hematocrito de los felinos en estudio 

 

En la población evaluada, el 92,5% (n=37), de los felinos presentó valores de 

hematocrito dentro del rango referencial (28-47 %), mientras que el 7,5% (n=3) 

restante se encontró por debajo de dicho intervalo. Adicionalmente, en este estudio 

no se registraron individuos con valores superiores a 47%, con una media general 

de 37% y un rango inter-cuartil desde 35% - 40%. Estos resultados reflejan que la 

gran mayoría de los animales mantuvieron parámetros hematológicos dentro de la 

normalidad, con una minoría que mostró niveles reducidos. 

7,50%

92,50%

0%
0,00%

10,00%

20,00%

30,00%

40,00%

50,00%

60,00%

70,00%

80,00%

90,00%

100,00%

<28 28-47 >47

Hematocrito



 

 
50 

 

Ternisien et al. (2024) realizaron un estudio de tipificación sanguínea en 19 gatos, 

todos con el grupo sanguíneo A. Además, se efectuaron exámenes hematológicos 

completos, perfiles bioquímicos y evaluaciones clínicas, encontrando que los 

valores de hematocrito se mantuvieron dentro del rango de referencia (28–47%). 

Estos resultados sugieren que en dicha población la condición hematológica fue 

adecuada y se mantuvo dentro de parámetros normales en los individuos con 

tipificación sanguínea A.  

Dwivedi & Shukla (2022) señalan que valores de hematocrito por debajo del rango 

referencial suelen estar asociados a un proceso anémico, lo cual requiere 

correlacionar dichos hallazgos con la concentración de hemoglobina y los índices 

eritrocitarios para precisar el tipo de alteración hematológica. Asimismo, destacan 

que niveles elevados de sólidos totales (proteínas totales) son indicativos de 

hemoconcentración o de un