UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS RECURSOS NATURALES Y DEL AMBIENTE CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA TEMA DETERMINACIÓN DE LA IMPORTANCIA DE LA BIOMETRÍA HEMÁTICA EN LOS DIFERENTES TIPOS DE ANEMIA, EN CANINOS EN LA CIUDAD DE RIOBAMBA. Proyecto de Investigación, previo a la obtención del título de Médica Veterinaria Zootecnista, otorgado por la Universidad Estatal de Bolívar a través de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, Recursos Naturales y del Ambiente. Carrera de Medicina Veterinaria y Zootecnia. AUTORA GISSELA JESSICA CANCHALA MONTENEGRO DIRECTOR DR. WASHINGTON ROLANDO CARRASCO MANCERO. MSc Guaranda – Ecuador 2021 DETERMINACIÓN DE LA IMPORTANCIA DE LA BIOMETRÍA HEMÁTICA EN LOS DIFERENTES TIPOS DE ANEMIA, EN CANINOS EN LA CIUDAD DE RIOBAMBA APROBADO POR LOS MIEMBROS DEL TRIBUNAL DEDICATORIA A Dios por darme la vida, quien ha sido mi fortaleza y guía durante toda mi vida. A mi padre Rodolfo Canchala por haber depositado su entera confianza en cada reto que se me presentaba sin dudar ni un solo momento en mi inteligencia y capacidad de salir adelante, siendo mi inspiración para formarme profesionalmente. Mi éxito es para ti A mi ángel del cielo que desde arriba me ilumina y me motiva a ser mejor persona A mi familia por cada una de sus oraciones consejos y por ser mi apoyo incondicional en los momentos de tristeza A todos los animalitos con los que hice practicas Gissela Jessica Canchala Montenegro AGRADECIMIENTO Quiero expresar gratitud a mi Virgen Santísima Guadalupana, Divino Niño y a Dios por ser el apoyo, fortaleza, protección y guías en aquellos momentos de dificultad y debilidad De igual forma, agradezco a mi padre Rodolfo Canchala por confiar y creer en mí, estar dispuesto acompañarme durante mi carrera universitaria con cada una de sus oraciones y consejos A ustedes mi segunda familia Lidia Montenegro, Rodrigo Oviedo, Josué Oviedo quienes me impulsaron a seguir adelante con cada palabra de aliento y constancia para no rendirme De manera especial a mi tribunal de tesis el Dr.: Washington Carrasco Mancero, Dr.: Luis Salas , Dr.: Danilo Yánez, por haberme guiado no solo en la elaboración de mi trabajo de titulación ,sino a lo largo de mi carrera universitaria y por brindarme el apoyo para desarrollarme profesionalmente y seguir creciendo Deseo agradecer a la Universidad Estatal de Bolívar, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Recursos Naturales y del Ambiente, Carrera de Medicina Veterinaria y Zootecnia, y a cada uno de los Docentes quienes impartieron sus conocimientos para darme la oportunidad de ser un profesional Para ellos, muchas gracias por todo Gissela Jessica Canchala Montenegro ÍNDICE DE CONTENIDO DESCRIPCIÓN Pág. I. INTRODUCCIÓN Y OBJETIVOS 1 II. PROBLEMA 2 III. MARCO TEÓRICO 3 3.1. HEMATOLOGÍA 3 3.1.1 Sangre 3 3.1.2. Eritrocitos 4 3.1.2.1 Factores fisiológicos que ocasionan variación en el número de Eritrocitos 5 3.1.2.2. Alteraciones en el color 5 3.1.3. Hematocrito 7 3.1.4. Hemoglobina 7 3.1.5. Índices eritrocitarios 8 3.1.6. Serie blanca 10 3.2. ANEMIA 13 3.2.1. Clasificación 14 3.2.1.1. Según la respuesta medular 14 3.2.1.2 Presencia de hemolisis en el organismo 15 3.2.1.3 Según su morfología 16 3.2.1.4. Clasificación de anemia según su severidad 17 3.3 CONSTANTES FISIOLÓGICAS 18 3.3.1. Frecuencia Cardiaca 18 3.3.2. Frecuencia respiratoria 18 3.3.3. Temperatura 19 3.3.4. Tiempo de llenado capilar 19 3.3.5. Condición corporal 19 3.4. BIOMETRÍA HEMÁTICA 19 3.4.1. Toma de muestra 20 3.4.2. Procedimiento para obtención de sangre 20 3.4.3. Valores de referencia 21 IV. MATERIALES Y MÉTODOS 22 4.1. MATERIALES 22 4.1.1. Ubicación de la investigación 22 4.1.2. Localización de la investigación 22 4.1.3. Situación geográfica y climática 22 4.1.4. Zona de vida 22 4.1.5. Materiales y equipos 23 4.1.5.1. Material experimental 23 4.1.5.2. Material de campo 23 4.1.5.3. Instalación 23 4.1.5.4. Material de oficina 23 4.2. MÉTODOS 24 4.2.1. Método de campo 24 4.2.2. Factor en estudio 24 4.2.3. Análisis estadístico y funcional 24 4.2.4. Medición experimental 25 4.2.5. Métodos evaluados y datos tomados 25 4.2.6. Procedimiento experimental 27 V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 29 5.1. EDAD (E) 29 5.2. SEXO (S) 30 5.3. RAZA (R) 31 5.4. PESO (P) 32 5.5. CONDICIÓN CORPORAL (C/C) 33 5.6. TIPO DE ALIMENTO (TA) 34 5.7. CONSTANTES FISIOLÓGICAS ( C/F) 35 5.8. ANÁLISIS DEL HEMOGRAMA(AH) 37 59. VI. TIPOS DE ANEMIA (T/A) COMPROBACIÓN DE LA HIPÓTESIS 39 40 VII. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 41 7.1. CONCLUSIONES 41 7.2. RECOMENDACIONES 42 BIBLIOGRAFÍA ANEXOS ÍNDICE DE CUADROS DESCRIPCIÓN CUADRO N° Pág. 1. Diferentes clasificaciones de la anemia en caninos atendiendo a varios criterios 28 2. Tipos de hemolisis 29 3. Clasificación de la anemia según su severidad 37 4. Valores hematológicos referenciales para perro y gato 38 5. Condiciones meteorológicas y climáticas 39 6. Variable edad 40 7. Variable sexo 41 8. Variable raza 42 9. Variable peso 43 10. Variable condición corporal 44 11. Variable tipo de alimento 45 12. Variable constantes fisiológicas 46 13. Variable análisis del hemograma 46 14. Variable tipos de anemia ÍNDICE DE GRÁFICOS DESCRIPCIÓN GRÁFICO N° Pág. 1. Eritrocito también llamado glóbulo rojo / hematíe 7 2. Policromasia 9 3. Hematíes con un bajo contenido hemoglobínico, o hipocromos, en la anemia ferropénica 10 4. Variación en el color/ cantidad de hemoglobina presente 11 5. Neutrófilos y macrófagos 37 6. Linfocito en la mitad superior con citoplasma azul claro 38 7. Variable tipos de anemia 8. Variable edad 39 9. Variable sexo 40 1’. Variable raza 41 11. Variable peso 42 12. Variable condición corporal 43 13. Variable tipo de alimento 44 45 ÍNDICE DE ANEXOS DESCRIPCIÓN ANEXO N° 1. Ubicación del proyecto de Investigación 2. Base de datos 3. Sistema de índice de condición corporal para perros 4. Hemograma 5. Historia clinica 6. Actividades realizadas durante el proceso de investigación 7. Fotos virtuales realizadas durante el proceso de investigación RESUMEN En la ciudad de Riobamba, Parroquia Lizarzaburu ubicada a 2758 msnm, se comprobó la determinación de la importancia de la biometría hemática en los diferentes tipos de anemia, en caninos en la ciudad de Riobamba; Se aplicó un modelo estadístico analítico descriptivo en 50 muestras sanguíneas; Se calculó porcentajes, medias, frecuencia y gráfico; Los objetivos planteados fueron: 1) Realizar hemogramas a diferentes caninos. 2) Interpretar los resultados del hemograma. y 3) Identificar los diferentes tipos de anemia; Las variables evaluadas y resultados fueron; Edad (E): 1-4 meses 68 % ; Sexo (S): Macho 54%; Raza (R): Caniche 20; Peso (P): 2-4 Kg y 5-8 Kg 50 %; Condición corporal (C/C): Delgado 2/9 86 % ; Tipo de alimento(TA): Casera 48%;Constantes fisiológicas (CF):Temperatura 39°C, Frecuencia cardiaca 140 lpm, Frecuencia respiratoria 23 rpm y Tiempo de llenado capilar 3 seg ;Análisis de hemograma (AH):Anemia 74% ;Tipos de anemia (TA):Normocítica normocrómica 68%; Finalmente, se comprueba la hipótesis planteada en la investigación que mediante la biometría hemática se puede diferenciar el tipo de anemia que presentan los caninos , sin distinción de sus causas como alimentación, raza ,sexo, edad y enfermedades subclínicas Palabras claves: Hemograma, anemia, sanguíneas SUMMARY In the city of Riobamba, Lizarzaburu Parish located at 2758 meters above sea level, the determination of the importance of hematic biometry in the different types of anemia in dogs in the city of Riobamba was verified; A descriptive analytical statistical model was applied in 50 blood samples; Percentages, means, frequency and graph were calculated; The proposed objectives were: 1) Carry out blood counts on different canines. 2) Interpret the results of the blood count. and 3) Identify the different types of anemia; The variables evaluated and results were; Age (E): 1-4 months 68%; Sex (S): Male 54%; Breed (right): Poodle 20; Weight (P): 2-4 Kg and 5-8 Kg 50%; Body condition (C / C): Slim 2/9 86%; Type of food (TA): Homemade 48%; Physiological constants (CF): Temperature 39 ° C, Heart rate 140 bpm, Respiratory rate 23 rpm and Capillary filling time 3 sec; Analysis blood count (HA): Anemia 74%; Types of anemia (AT): Normochromic normocytic 68%; Finally, the hypothesis raised in the research is verified that by means of hematic biometry the type of anemia that canines present can be differentiated, without distinction of its causes such as diet, race, sex, age and subclinical diseases Keywords: Hemogram, anemia, blood CÁPITULO I. INTRODUCCIÓN Y OBJETIVOS Los análisis sanguíneos son una herramienta complementaria, de gran valor, en el diagnóstico clínico del paciente, especialmente en animales de compañía como el perro. La confiabilidad de los resultados depende, entre otros factores, de la preservación de la integridad de la sangre Los valores del hemograma en el perro pueden variar debido a distintos factores inherentes a la raza, sexo, edad, ambiente, entre otros. Por tanto, para analizar con objetividad los valores individuales de un paciente, es necesario tener una línea básica, valores de referencia, obtenidos de una muestra poblacional representativa de animales mantenidos bajo condiciones generales similares La anemia se presenta cuando ocurre cualquier descenso en el número de eritrocitos o cuando su contenido hemoglobínico no está en los límites normales; esta presenta distintas variables puede ser macrocítica (VCM elevado), normocítica (VCM normal), microciticas (VCM disminuido), normocrómicas (MCHC normal), hipocromía (MCHC disminuido) El trabajo de investigación determino diagnosticar las diferentes alteraciones patológicas que pueda ser utilizada por los Médicos Veterinarios para diferenciar los tipos de anemia y emitir un mejor criterio en el bienestar del paciente · Realizar hemogramas a diferentes caninos · Interpretar los resultados del hemograma · Identificar los diferentes tipos de anemia en caninos mestizos CAPITULO II. PROBLEMA Como todo ser vivo, el perro es susceptible a padecer enfermedades que requieren la atención inmediata y eficaz del médico veterinario, la aplicación de un adecuado examen físico, con el desarrollo de exámenes complementarios que le permitan sustentar diagnósticos precisos. Uno de los exámenes más valiosos y sencillos de realizar es el estudio hematimétrico El diagnóstico de las alteraciones hemáticas en los animales con el análisis de laboratorio es importante, ya que permite realizar un pronóstico y tratamiento, Otro aspecto a tener en cuenta son los errores en la interpretación de los resultados , existen diferentes métodos para facilitar la interpretación, cómo definir el orden adecuado de aparición de las magnitudes biológicas y disponer de correctos valores de referencia o valores discriminantes Es por eso que esta investigación hace referencia a la importancia del análisis sanguíneo para determinar los tipos de anemia y emitir un tratamiento adecuado dependiendo de la patología a presentar 42 CAPITULO III. MARCO TEÓRICO 3.1. HEMATOLOGÍA 3.1.1. Sangre La sangre, llamada también tejido sanguíneo, es un tejido conjuntivo especializado. Aunque en sentido estricto no contribuye a unir físicamente un tejido con otro, si los relaciona a plenitud pues transporta una serie de sustancias de un conjunto de células a otro. Utilizando para tal fin una extensa e intrincada red de vasos que constituyen parte del aparato circulatorio sanguíneo (Montalvo, 2018) · Funciones de la sangre Constituye el sistema de trasporte de los gases respiratorios, a partir de los glóbulos rojos (hemoglobina) y el plasma, desde los pulmones hacia los tejidos (O2) y desde los tejidos hacia los pulmones (CO2) Aporte de nutrientes no gaseosos (biomoléculas, vitaminas, minerales y agua) desde el tracto gastrointestinal a todas y cada una de las células del organismo. Papel excretor, a través de la cual viajan los productos de metabolismo celular (creatinina, urea y ácido úrico) hacia los órganos de excreción o de eliminación (riñones, hígado y piel) Se encarga de transportar las hormonas que ejercen sus funciones en los tejidos blancos respectivos Autodefensa por la posibilidad de coagularse (mecanismo de coagulación). Sistema de defensa general del organismo o inmunológico, por constituir el medio de transporte de los leucocitos que unidos a los anticuerpos (inmunoglobulinas) participan eficazmente en los procesos defensivos del organismo contra gérmenes, cuerpos extraños y toxinas (Lescano, 2016) 3.1.2. Eritrocitos El eritrocito (GR) es un disco bicóncavo, no poseen núcleo, el color es rojo, rosa o anaranjado. En el perro el diámetro del eritrocito es de 7 μm. La principal función de los eritrocitos es la de transportar oxígeno y dióxido de carbono, esta función está relacionada con la hemoglobina. Los eritrocitos llevan el oxígeno de los pulmones a los tejidos y el dióxido de carbono en sentido inverso. Se componen de 65% de agua, 33% de hemoglobina y de enzimas, coenzimas, carbohidratos y diversos minerales como son: P, S, ZN, Cu, K, Mn, Al, Na, Ca, Mg (Lopez, 2017) En los perros, el período de vida de los glóbulos rojos circulantes es de aproximadamente 100 días, por lo tanto, diariamente solo alrededor del 1% de los glóbulos rojos circulantes mueren y deben ser reemplazado (Saquicela, 2019) Gráfico Nº 1. Eritrocito también llamado glóbulo rojo /hematíe Fuente: (Vetlab, 2020) 3.1.2.1. Factores fisiológicos que ocasionan variación en el número de eritrocitos La Eritrocitosis se define como el aumento en el valor del hematocrito, la hemoglobina y los eritrocitos, por arriba de los límites estándar para la especie. Se clasifica en: eritrocitosis relativa y verdadera · Eritrocitosis verdadera Como respuesta fisiológica, por grandes alturas sobre el nivel del mar. La producción de eritropoyetina es desencadenada por una hipoxia tisular o disminución de la saturación del oxígeno arterial; esto puede ocurrir en forma funcional como respuesta a grandes altitudes. Por hipoxia. Como resultado de la hipoxia provocada por enfermedades pulmonares y cardiacas crónicas, en las que no hay una oxigenación completa de la sangre en los pulmones o por desviación arteriovenosa de la sangre (Candelas, 2014) · Eritrocitosis relativa La eritrocitosis relativa es la forma más común, es causada por deshidratación. La masa total de eritrocitos es normal, pero el volumen de plasma disminuye. La proteína total plasmática con frecuencia también está elevada. Generalmente resulta en un aumento leve de Hto, que rara vez supera valores de 0.60 – 0.65 L/L.8 Sin embargo, el Hto puede ser tan alto como 0.70 a 0.80 L/L en algunos perros con el síndrome de gastroenteritis hemorrágica debido a la rápida pérdida de líquido en el intestino (Barbosa, 2019) 3.1.2.2. Alteraciones en el color · Policromasia A la presencia de eritrocitos que tienen una coloración azul-grisácea en el frotis sanguíneo se le llama policromasia y a cada eritrocito de manera individual con esas características se le denomina policromatófilo. Los policromatófilos suelen ser más grandes que los eritrocitos normales y la coloración azul la adquieren debido a la presencia de ARN ribosomal. Estas células son eritrocitos inmaduros que han sido liberados de médula ósea de forma temprana, por lo tanto, el aumento en la policromasia particularmente en animales con anemia, se asocia a respuesta medular y a una eritropoyesis activa, de hecho, los eritrocitos policromatófilos en una tinción tipo Romanowsky corresponden a reticulocitos cuando estos son teñidos con una tinción supravital (nuevo azul de metileno o azul de cresilo brillante). En perros y cerdos sanos puede observarse una poca cantidad de policromatófilos (1.5%) (Osorio, 2015) Gráfico Nº 2. Policromasia Fuente: (Osorio, 2015) · Eritrocitos fantasma (lisados) Son eritrocitos que se tiñen extremadamente pálidos, principalmente porque están compuestos únicamente de una membrana citoplasmática con una pequeña cantidad de hemoglobina residual en la periferia. Estos eritrocitos comúnmente son consecuencia de hemólisis intravascular mediada por la fijación del complemento o por el daño producido por el complejo de ataque de membrana que forma poros en el eritrocito por los cuales se libera la hemoglobina (Garcia L. , 2019) · Hipocromia Los hematíes hipocromos tienen un menor contenido en hemoglobina, por lo que la zona pálida central es de mayor diámetro. La hipocromía es característica de la anemia ferropénica (Merino, 2015) Gráfico N º3. Hematíes con un bajo contenido hemoglobínico, o hipocromos, en la anemia ferropénica Fuente: (Merino, 2015) 3.1.3. Hematocrito El HCT (Hematocrito), es la proporción del volumen de los eritrocitos respecto al de la sangre completa, el procedimiento de laboratorio mediante el cual se determina el volumen total de glóbulos rojos, consiste en centrifugar sangre completa durante un periodo de tiempo determinado para obtener la agrupación de glóbulos rojos, después se mide el volumen de glóbulos rojos y el de sangre completa; esta proporción se expresa en porcentajes o fracción decimal (Gutierrez, 2019) 3.1.4. Hemoglobina La hemoglobina (Hb) es el pigmento transportador de oxígeno formado por los hematíes en desarrollo en la médula ósea, el valor de hemoglobina de una muestra de sangre es aproximadamente un tercio del VPG. Variaciones de dicho valor son indicativas de un error de laboratorio, de hemólisis o de anomalías, como cuerpos de Heinz o lipemia · Funciones Transporte de oxígeno de los pulmones a los tejidos y bióxido de carbono en dirección opuesta Participa en la regulación del equilibrio ácido-base por la eliminación del bióxido de carbono de los pulmones y por acción amortiguadora de los grupos imidazol e histidina de la globina (Hernandez, 2018) 3.1.5. Índices eritrocitarios · Volumen corpuscular medio Corresponde al volumen promedio de los eritrocitos, se expresa en femtolitros o micras cúbicas, en caninos es 70 fl. Un VCM aumentado se denomina macrocitosis, es decir indica la presencia de glóbulos rojos más grandes de lo normal; en cambio un VCM disminuido se denomina microcitosis, e indica la presencia de glóbulos rojos que son más pequeños que el tamaño promedio (Alvarado, 2017) Macrocitosis: El VCM está elevado y generalmente unido a la anemia. La fisiología de la se puede resumir: Eritropoyesis acelerada: Se presenta en la anemia por pérdida de sangre y en la hemólisis Síntesis defectuosa del ADN: La falta de equilibrio entre el ADN y el ARN conduce a una excesiva producción de hemoglobina y como consecuencia un aumento del tamaño celular Aumento de la membrana celular: Se produce como consecuencia de un exceso de lípidos (colesterol y fosfolípidos) en la membrana de los macrocitos que se presentan en las enfermedades hepáticas (Iipidosis y quistes) y en las enfermedades esplénicas Trastornos de la producción y maduración eritrocitaria: Debidos a alteraciones de la célula madre o del micro ambiente por agentes químicos, víricos y neoplasias (Garcia A. , 2016) Microcitosis: Indica una alteración por disminución considerable del VCM. Las microcitosis pueden ser congénitas y adquiridas Las principales microcitosis congénitas son: Cortocircuito portosistémico: Se presenta cuando existe comunicación vascular entre la vena porta y las venas sistémicas que permite el acceso de la sangre portal a la circulación sistémica sin pasar primero a través del hígado. Los hallazgos hematológicos incluyen microcitosis, poiquilocitosis (principalmente en gatos) y anemia no regenerativa Microcitosis adquiridas: Deficiencias de hierro. Se produce una anemia no regenerativa por una deficiencia en la síntesis de hemoglobina. Esto ocurre cuando hay un incremento de la utilización del hierro (ej. durante el crecimiento), por una disminución de la absorción intestinal del mismo y más comúnmente cuando las reservas de hierro se reducen por hemorragias y pérdidas crónicas de sangre. Las principales etiologías son parásitos internos y externos, neoplasias con tejidos necróticos, traumatismos, coagulopatías y varias enfermedades gastrointestinales. Hematológicamente hay hipocromasia, microcitosis y poiquilocitosis. Deficiencias de cobre, piridoxina, vitamina B6 (casos raros) Enfermedad inflamatoria crónica Presencia de anemia normocítica y normocrómica, aunque también puede presentarse microcitosis e hipocromia. Se diferencia de la deficiencia de hierro porque la primera tiene el hierro sérico bajo y la ferritina alta y en la deficiencia de hierro están bajas las dos. (Giger, 2012) Gráfico N º 4. Variación en el color/ cantidad de hemoglobina presente Fuente: (hematologico, 2018) · Hemoglobina corpuscular media Es el peso promedio de la hemoglobina en cada eritrocito, o la cantidad promedio de hemoglobina que contiene un glóbulo rojo. Se expresa en picogramos (pg). No es una medición muy útil, debido a que no toma en cuenta el tamaño del eritrocito (Cuno, 2017) · Concentración media de hemoglobina Indica la concentración media de hemoglobina por eritrocito. Se calcula dividiendo la Hb por el HCT y, debido a que este último este afectado por el tamaño de los eritrocitos, la MCHC es el indicador más útil de la cantidad de hemoglobina presente en los eritrocitos Cuando la CHCM se encuentra en un nivel bajo, esto puede significar que el paciente tiene anemia por deficiencia de hierro. Este tipo de anemia puede ser causada por insuficiencia de hierro en la dieta o por pérdida de sangre. Los altos niveles de CHCM pueden indicar la presencia de una anemia macrocítica y puede deberse a varios motivos, entre los que se incluyen problemas de hígado y deficiencias de vitamina B12 y ácido fólico (folato) (Yanqui, 2018) 3.1.6. Serie blanca · Neutrófilos Los neutrófilos son producidos en la médula ósea y liberados a sangre cuando están maduros; normalmente este proceso se completa en pocos días después de una breve estancia dentro de la circulación, entran en los tejidos y cavidades corporales para realizar sus funciones fisiológicas, como mediar la respuesta inmune contra microrganismos infecciosos (Nieto, 2017) GRAFICO N º 5. Neutrófilos y macrófagos Fuente: (Ponce, 2016) Desviación a la izquierda: Aumento de neutrófilos inmaduros o no segmentados en la circulación. Indica la presencia de una inflamación por un aumento en la demanda de neutrófilos, sin que la médula ósea logre cubrirla Desviación a la derecha: Indica una larga estancia de los neutrófilos en la circulación. La causa más frecuente es el hiperadrenocorticismo. Los corticoesteroides estabilizan las membranas celulares inhibiendo la migración neutrófila hacia los tejidos (Sarango, 2015) · Linfocitos Constituyen la piedra angular de la respuesta inmune del organismo. Los linfocitos T y B no pueden diferenciarse entre sí por la observación microscópica de un extendido sanguíneo coloreado. La mayoría de los linfocitos residen dentro de los órganos linfoides (linfonódulos, timo, bazo y médula ósea). Los linfocitos circulantes en sangre periférica representan una pequeña proporción de la población total y la mayoría provienen de los linfonódulos. En líneas generales, podemos decir que cerca del 50 a 75% de los linfocitos circulantes son del tipo T, entre el 20 y 30% linfocitos B y un 5 a 10% de los linfocitos circulantes corresponde a las células natural killer (NK) que se presentan como linfocitos granulosos grandes en la mayoría de las especies (Pintos, 2020) Gráfico Nº 6. Linfocito en la mitad superior con citoplasma azul claro Fuente: (Pintos, 2020) Las principales causas de linfocitosis son Vacunaciones Forcejeo (principalmente en gatos cachorros) Animales jóvenes (fisiológica) Leucemia linfocítica Linfosarcoma leucémico Las principales causas de linfopenia son Estrés Hiperadrenocorticismo Corticoterapia Infecciones virales, como el moquillo canino Linfangiectasia Quilotórax (Aguirre, 2015) · Monocitos Se originan en la medula ósea, a diferencia de los granulocitos, se liberan a la circulación periférica todavía como células inmaduras y se transportan a los tejidos en donde pueden diferenciarse en macrófagos, células epiteloides, o células inflamatorias gigantes multinucleadas. Los monocitos caninos y felinos son más grandes que los neutrófilos y de tamaño similar a los eosinófilos y basófilos. El núcleo varía enormemente en morfología, adoptando desde formas alargadas en “U”, que recuerdan a los neutrófilos en banda, a formas multilobuladas irregulares (Zulmi, 2018) · Eosinofilos Los Eosinofilos son células grandes (11-17μm), redondas, con gránulos citoplasmáticos esféricos eosinofílicos. El núcleo tiene una forma variable, desde redondo a ligeramente elongado. Tiene la función de fagocitosis y destrucción de microorganismos (parásitos) y son mediadores en reacciones de hipersensibilidad tipo I. El incremento de Eosinofilos se asociados con infecciones parasitarias y la estimulación del sistema inmune. Su disminución se ha relacionado con la estivación (Bastidas, 2016) · Basófilos Son los granulocitos menos numerosos, normalmente no se encuentran fuera de la circulación sanguínea, pero pueden entrar a los tejidos bajo influencia de ciertas quimioquinas producidas por linfocitos T, la relación exacta entre basófilos y mastocitos ha sido un tema de controversia durante mucho tiempo, así aunque las funciones de ambos tipos de células son evidentemente similares, sus características y su distribución en los tejidos son muy diferentes (Morales, 2016) 3.2. ANEMIA La anemia es un estado patológico que puede cursar con disminución del conteo eritrocitario, de la hemoglobina o del hematocrito. Su mayor importancia es una capacidad reducida de la sangre para el transporte de oxígeno a los tejidos. La anemia se desarrolla cuando hay uno o más de los siguientes factores: aumento de la pérdida de eritrocitos debido a la pérdida de sangre, destrucción acelerada de eritrocitos (hemólisis patológica) y/o disminución de la producción efectiva de eritrocitos (Gonzalez, 2019) 3.2.1. Clasificación de las anemias La anemia se clasifica de acuerdo a su morfología, volumen corpuscular medio y el ancho de distribución de los glóbulos rojos. La anemia no es una enfermedad, sin embargo es la manifestación clínica de otro problema, es decir que es el resultado en el paciente de una patología de base (Murcia, 2020) Cuadro Nº 1. Diferentes clasificaciones de la anemia en caninos atendiendo a varios criterios Fuente: (Mendoza, 2020) 3.2.1.1. Según la respuesta medular No regenerativa: La médula ósea responde de manera anormal, y no puede mantener la “producción” normal de glóbulos rojos. Esto puede ser debido a causas extra medulares o medulares. Muchas anemias no regenerativas de perros y gatos son de carácter crónico. Estos tipos de anemia se suelen detectar de manera “accidental” durante la exploración rutinaria o un chequeo ya que el animal suele ser asintomático para su propietario porque en muchos casos la anemia es leve y tiene poca sintomatología. La causa del “mal” funcionamiento de la médula ósea puede ser un problema existente fuera de la médula, por ejemplo, un déficit de hierro que hace que no se pueda formar hemoglobina conduce a anemia. La anemia de enfermedad crónica es otro tipo de anemia no regenerativa muy frecuente en perros y gatos secundaria a una gran variedad de procesos inflamatorios, degenerativos y neoplásicos (tumores) (Davila, 2021) Regenerativa: Cuando la médula ósea responde bien a la anemia y aumenta la producción de eritrocitos. Como existe regeneración por parte de la médula, el problema estará en una causa fuera de la médula, habrá una pérdida de sangre o una destrucción de los glóbulos rojos. La regeneración sugiere una causa extramedular de anemia, una pérdida de sangre (hemorragia) o una destrucción de eritrocitos (hemólisis) (Rebar, 2015) 3.2.1.2. Presencia de hemolisis en el organismo Cuadro N º 2. Tipos de hemolisis Fuente: (Benites, 2014) 3.2.1.3. Según su morfología Normocítica normocrómica: Esta anemia se caracteriza por presentar eritrocitos de tamaño y color normal; puede ocurrir por una síntesis de eritropoyetina a nivel renal, lo que ocasiona una disminución en la diferenciación del eritrocito, por daño directo en la medula ósea que afecta a las células progenitoras eritrocíticas. Las causas comunes son: insuficiencia renal crónica, quimioterapia y radioterapia, administración de fármacos como estrógenos y empleo de sulfas, hemorragias agudas y hemólisis. Este tipo de anemia es no regenerativa, con la excepción de la que se presenta en las hemorragias agudas y hemólisis que tiende a la regeneración. (Benites, 2014) Según (Ochoa, 2017) son no regenerativas, con excepción de la que presenta con hemorragias agudas y hemolisis, que tienden a la regeneración. Causas Aplasia eritrocitaria pura adquirida (en ocasiones puede presentar macrocitosis). Al inicio de la anemia de las enfermedades crónicas, pues en las fases avanzadas de estas, aparece anisocitosis, anisocromía (diferentes colores) e hipocromía. Insuficiencia renal crónica normocromía y normocitosis en el período inicial, pero cuando avanza la enfermedad, se incorporan varios factores que incrementan la anemia y se presentan diversos cambios morfológicos En las primeras etapas de la anemia ferropénica Macrocitica normocrómica: Se caracteriza por un mayor tamaño de los eritrocitos y con la misma cantidad de hemoglobina que un eritrocito normal. Se presenta por una detención en la diferenciación del eritrocito en la etapa de rubricito, lo que ocasiona una falta de división celular. Este tipo de anemia se presenta por deficiencia de ácido fólico, vitamina B12 y cobalto. El ácido fólico actúa como coenzima con la vitamina B12, en la formación de ácido nucleico. Cobalto, esencial en el metabolismo de la vitamina B12 en rumiantes. Es raro encontrar este tipo de anemia en animales, las causas más comunes son: en gatos, leucemia viral felina e inmunodeficiencia felina, y como un paso previo a la anemia macrocítica hipocrómica; probablemente esta anemia se presenta por un efecto mielodisplásico directo del virus. En perros de raza poodle es común observar macrocitosis (Nuñez, 2007) Microcitica hipocromica: Es una anemia con eritrocitos más pequeños y con menos cantidad de hemoglobina que un eritrocito normal. Ocurre cuando se detiene la etapa de diferenciación en rubricito, ocasionando una doble división del mismo, cuya consecuencia son eritrocitos más pequeños, con menos cantidad de hemoglobina. La causa de este tipo de anemia es la deficiencia de hierro, piridoxina o cobre Otra de las causas de este tipo de anemia se observa cuando los animales presentan inflamación crónica debida al secuestro de hierro por los macrófagos. Este efecto se presenta por liberación de interleucinas por los macrófagos, principalmente IL-1, IL-6 y el factor de necrosis tumoral. Es importante destacar que en casos de inflamación crónica es más común encontrar la anemia normocítica normocrómica (Hernandez, 2018) Macrocitica hipocromica: Los eritrocitos son más grandes de lo normal y tienen menor cantidad de hemoglobina; Este tipo de anemia es la única que es regenerativa (Guale, 2020) El VCM estará elevado pero la CHCM se registrara con valores bajos suele aparecer en la fase tardía (etapa de recuperación) de las hemorragias copiosas (por heridas, coagulopatías) y afecciones hemolíticas (por hemoprotozoarios, toxicidad medicamentosa o enfermedades inmunomediada) también ocurre en la anemia congénita del Basenji y en la estomatocitosis hereditarias del perro (Coppo, 2019) 3.2.1.4. Clasificación de anemia según su severidad El valor del hematocrito es usado frecuentemente para valorar la anemia, también se puede usar el recuento de glóbulos rojos o la concentración de hemoglobina. Cada especie de animal tiene un valor normal de hematocrito diferente. (Saavedra, 2019) Cuadro Nº 3. Clasificación de la anemia según su severidad Hematocrito Leve Moderada Severa Muy severa Normal 30-36% 20-29 % 13-19% < 13% 37-56% Fuente: (Arellano, 2019) 3.3. CONSTANTES FISIOLÓGICAS 3.3.1. Frecuencia cardiaca La frecuencia cardíaca es el número de ciclos cardíacos que se producen por minuto, este número es distinto según la especie animal. Los animales de talla pequeña tienen la frecuencia cardíaca notablemente elevada en relación a los animales de talla grande y está en relación con la intensidad de los procesos metabólicos. Un incremento notable de la frecuencia cardíaca se designa con el nombre de taquicardia y su disminución se denomina bradicardia. Sobre la frecuencia cardíaca tienen influencia, en particular, los siguientes factores (Jesus, 2013) Corpulencia del animal Edad del animal Carga metabólica del animal Temperatura corporal y ambiental La alimentación. 3.3.2. Frecuencia respiratoria Es el número de respiraciones por minuto (rpm), en el cual existe una variación relativamente amplia, sobre todo en el perro, dependiendo del tamaño corporal varía mucho. Las variaciones más notorias en la FR son el incremento denominado taquipnea y la disminución de la misma denominada bradipnea, reportaron que la FR promedio para perros adultos es de 18 a 34 rpm (Narvaez, 2016) 3.3.3. Temperatura Particularmente importante cuando hablamos de cachorros, ya que durante sus primeras semanas de vida son incapaces de regular su temperatura, manteniendo la del ambiente en el que se encuentren. Así, la temperatura del cachorro recién nacido oscila entre los 34,4 y los 36,1 ºC. Al mes de vida ya alcanzan los 37,8º, como los perros adultos (Besteiros, 2019) 3.3.4. Tiempo de llenado capilar Este parámetro se mide haciendo presión sobre la encía del paciente hasta tener una coloración blanca, se retira la presión y se cuentan los segundos en los que la mucosa vuelve a su color normal (Mahecha, 2021) 3.3.5. Condición corporal Se evalúan una serie de características anatómicas, incluida la silueta del animal y varias prominencias óseas, mediante palpación e inspección visual. Luego se decide un valor numérico con referencia a una serie de imágenes y descripciones de la silueta (Gand, 2018) Se considera que un perro tiene sobrepeso cuando supera entre un 15 y un 20% su peso ideal, mientras que por encima del 30% se considera que es obeso. Sin embargo, es fácil subestimar el peso de tu perro, así que la mejor manera de comprobar si está aumentando demasiado su peso es seguir el método de los 3 pasos: ver, sentir y pesar 3.4. BIOMETRÍA HEMÁTICA Es uno de los exámenes de laboratorio más solicitados, pues en un solo estudio se analizan tres líneas celulares completamente diferentes; los glóbulos rojos (eritroide), los glóbulos blancos (leucocitaria) y las plaquetas, que permiten la identificación de enfermedades hematológicas y contribuyen a determinar si existen patologías en algunos sistemas y órgano Por otra parte, los índices eritrocitarios que indican el contenido de hemoglobina por eritrocito y el tamaño de cada uno de ellos, son datos importantes que orientan a las posibles etiologías en pacientes con anemia; estos valores se realizan en una forma muy exacta calculados en equipos automatizados (Yánez, 2017) El hemograma completo (HC) es un perfil de pruebas utilizado para describir la cantidad y calidad de los elementos celulares presentes en la sangre y de algunas sustancias halladas en el plasma (Tepan, 2017) 3.4.1. Toma de muestra La recogida de sangre para hematología, bioquímica y pruebas especiales, debe realizarse por venopuncion de la forma menos traumática y más rápida posible, las muestras deben depositarse en el recipiente adecuado para cada tipo de análisis. Si la sangre se recoge del catéter, el protocolo correcto para drenar y muestreo se debe seguir cuidadosamente. La recogida traumática o lenta puede causar una activación de las plaquetas y la formación de micro trombos en la muestra recogida que no son visibles a simple vista, pero que interfieran en el análisis hematológico. El trauma puede dañar también las membranas de los eritrocitos y causar hemolisis A menos que se utilice un sistema vacutainer para la recogida de sangre, la aguja se debe retirar de la jeringa antes de transferir la sangre al tubo, evitando así el daño de las células y la hemolisis. Con los tubos vacutainer, una vez la aguja atravesado el tapón, debe permitirse que la sangre se transfiera de la jeringa al tubo sin añadir presión al embolo (Viliers, 2015) 3.4.2. Procedimiento para obtención de sangre Una vez que se realizó la sujeción del animal con bozal, la zona de venopunción deberá ser prolijamente rasurada y se realiza la antisepsia con soluciones apropiadas, luego se procede a la ingurgitación de la vena a través de un manguito de goma o la compresión con una mano a la altura de la articulación húmero radio-cubital o la articulación fémoro-tibio-rotuliana. Para la extracción en la vena yugular se realizará con el animal sentado sujeto sobre una camilla con los miembros delanteros presionado hacia abajo sobre el borde de la misma y la cabeza estirada hacia arriba (posición de esfinge) depilándose la zona lateral del cuello e ingurgitando la vena ejerciendo una leve presión con los dedos índice y mayor (Arauz, 2020) 3.4.3. Valores de referencia Los intervalos de referencia son específicos para cada estudio y grupo de referencia. No pueden ser transferidos entre laboratorios sin una validación previa, incluso si los equipos y las técnicas son las mismas ,teóricamente se deberían establecer los intervalos de referencia cada vez que se realiza un cambio de equipamiento o de reactivos pero también se debe tener en cuenta que el proceso para establecer los intervalos de referencia es difícil, costoso y consume mucho tiempo, por lo que es poco realista pretender que todos los laboratorios cuenten con valores de referencia propios cada vez que haya una renovación (Carzoli, 2019) CUADRO N° 4. Valores hematológicos referenciales para perro y gato Serie Variable Perro Gato Eritroide Hemoglobina (g/dl) 12-18 8-15 Hematocrito (%) 37-52 30-45 Eritrocitos totales (x 10^6/mm³) 5.5-8.2 4.6-10 Reticulocitos (%) 0.5-1.5 0.1-1.0 Volumen corpuscular medio-VCM (fl) 60-77 40-58 Hemoglobina corpuscular media-HCM 17-30 12-20 Concentración de hemoglobina corpuscular media - CHCM (g/dl) 31-37 29-37 Mieloide y linfoide Leucocitos totales (x10³/mm³) 9-15 5-14.5 Precursores linfoide y mieloide (%) 0 0 Neutrófilos bandas (%) 0-3 0-3 Neutrófilos segmentados (%) 60-77 50-60 Eosinofilos (%) 0-5 2-8 Basófilos (%) 0-1 0-2 Monocitos (%) 0-8 0-5 Linfocitos (%) 13-30 30-35 Plaquetas totales (x10³/mm³) 175-490 150-600 Fuente: (Laboratorio Suiza Vet, 2018) CÁPITULO IV. MARCO METODOLÓGICO 4.1. MATERIALES 4.1.1. Ubicación de la investigación El trabajo de investigación se lo ejecutó en la Clínica Veterinaria “Arca de Noé”. 4.1.2. Localización de la investigación País Ecuador Provincia Chimborazo Cantón Riobamba Parroquia Lizarzaburu Sector Riobamba Centro EL La investigación tuvo una duración de 90 días 4.1.3. Situación geográfica y climática Cuadro N° 5. Condiciones meteorológicas y climáticas COORDENADAS DMS Latitud 1°4 0’15” S Longitud 78°38’49” 0 COORDENADAS GPS Latitud -1.67098 Longitud -78.6471176 CONDICIONES METEOROLÓGICAS Altitud 2758 m.s.n.m. Humedad relativa promedio anual 85 % Precipitación promedio anual 561 mm/año Temperatura máxima 19 º C Temperatura media 13.5 º C Temperatura mínima 7.1 º C Fuente: Estación meteorológica ESPOCH 2021. 4.1.4. Zona de vida De acuerdo al sistema de clasificación de zonas de vida por Leslie Ransselaer Holdridge. El sitio experimental corresponde a la formación de zona vegetal piso montano o templado frio, (pmTF). 4.1.5. Materiales y equipos 4.1.5.1. Material experimental · 50 canes domésticos · Muestra sanguínea 4.1.5.2. Material de campo · Fonendoscopio · Termómetro · Cooler · Guantes quirúrgicos · Mascarillas · Filipina · Jeringas de 5 ml · Torundas de algodón · Bozal · Rasuradora · Mesa de exploración · Balanza · Tubos con EDTA · Monitor multiparametro · Maquina Vetscam Hm5 · Soluciones (Clorhexidina y alcohol antiséptico). 4.1.5.3. Instalación · Clínica Veterinaria “Arca de Noé” 4.1.5.4. Material de oficina · Libreta · Papel bond 4-A · Hemogramas · Resaltadores · Historia Clínica · Internet (computadora, impresora, copiadora, pendrive) · Libros, manuales y textos de referencia · Cámara fotográfica 4.2. MÉTODOS 4.2.1. Método de campo Para determinar la importancia de los tipos de anemia, se estableció la población, calculó de tamaño de la muestra en 50 canes y se analizó el estado general del paciente considerado como una unidad biológica Cada uno de los canes se le designo una historia clínica que determino los datos del propietario, registro e información general del paciente, información correspondiente a las variables de investigación; edad, sexo, raza, peso, condición corporal, llenado capilar, constantes fisiológicas, tipo de alimento, tipos de anemia y resultados del hemograma 4.2.2. Factor en estudio Tipos de anemia 4.2.3. Análisis estadístico y funcional Para esta investigación se utilizó el modelo estadístico cualitativo descriptivo, que permitió analizar casos particulares, hipótesis, conclusiones generales, reglas y procedimientos con la finalidad de alcanzar los objetivos Los resultados experimentales obtenidos fueron sometidos al siguiente análisis estadístico, a través del programa informático Excel · Medias µ · Frecuencia Fi – Fa · Gráficos 4.2.4. Medición experimental · Edad · Sexo · Raza · Peso · Condición corporal · Tipo de alimentación · Constantes fisiológicas · Análisis Hemograma · Tipos de anemia 4.2.5. Métodos evaluados y datos tomados · Edad (E): Variable cuantitativa continua se la estableció en las siguientes categorías · 1 mes a 4 meses · 5 meses a 8 meses · 9 meses a 12 meses · Sexo (S): Variable cualitativa dominal que determino el género de los animales expresado · Machos · Hembras · Raza (R): Variable que estipulo el pedigrí y el mestizaje de los canes · Mestizos · Otros · Peso (P): Variable cuantitativa continua que resulta de los datos expresados en kilogramos de acuerdo con los siguientes rangos: · 2-4 kg · 5-8 kg · Condición corporal (C/C): Variable que se evaluó según la siguiente escala · 2/9 Delgado · 5/9 Ideal · 7/9 Pesado · 9/9 Obeso · Tipo de alimentación (TP): Variable compleja indicador cualitativo que determina los distintos tipos de alimentación · Balanceado · Casera · Mixta · Constantes fisiológicas (C/F): Variable cuantitativa que especifica el estado de salud del animal · Frecuencia cardiaca · Frecuencia respiratoria · Temperatura · Análisis Hemograma (AH): Variable cuantitativa que establece el recuento sanguíneo. · Glóbulos rojos · Tipos de anemia (TA): Variable cuantitativa que determina valores de referencia. · Normocítica Normocrómica · Macrocitica Normocrómica · Macrocitica Hipocromica · Microcitica Hipocromica 4.2.6. Manejo del experimento Para la investigación se efectuó las siguientes actividades: · Anamnesis del paciente: Se realiza una serie de preguntas al dueño como la edad, sexo, raza, nombre, tipo de alimento, convivencia con otras mascotas y si posee carnet de vacunas y desparasitación · Toma de constantes fisiológicas: Se toma el peso del animal en Kg, se escuchó los latidos del corazón con un estetoscopio, observamos la frecuencia respiratoria, tomamos la temperatura rectal, tiempo de llenado capilar, condición corporal para evaluar el estado fisiológico del animal · Preparación del paciente: Sujetamos al paciente en posición decúbito esternal sujetando cuello, cabeza y miembros torácicos para que el canino no se mueva durante la toma de muestra, luego seleccionando cuidadosamente el sitio de venopuncion para rasurar el área y realizar una asepsia con alcohol al 70 % luego secamos con una torunda para evitar que se penetre por capilaridad y se produzca hemolisis la cual nos ayudara a reducir la incidencia de contaminación de la muestra · Toma de muestras para el hemograma: Se tomar la muestra de la vena yugular con una aguja de 18 G, de 1 pulgada más una jeringa 5 ml con el bisel para arriba, extrayendo 1ml de sangre para realizar el hemograma · Colocación de la muestra: Depositamos la muestra extraída en el tubo con EDTA para realizar un movimiento suave de arriba a abajo de 5 a 7 veces para homogenizar la muestra · Realizar hemograma: En la maquina Vetscam Hm5 registramos los siguientes datos, el tipo de animal, ID del paciente, nombre, edad, sexo y médico, presionamos ok y colocamos la muestra en la máquina para su respectivo análisis. Después de 2 a 3 minutos tenemos los resultados digitales y físicos para su respectivo análisis · Interpretación de resultados: Para la interpretación de resultados tomamos en cuenta la línea roja del paciente RBC: Recuento total de glóbulos rojos HCT: hematocrito Hb: hemoglobina VCM: volumen corpuscular medio CHCM: concentración media de hemoglobina Tabulación de datos. Analizamos e interpretamos los datos obtenidos mediante el modelo estadístico analítico descriptivo, elaborando cuadros de las variables en estudio con frecuencia y porcentajes para demostrar gráficamente los resultados de acuerdo a los objetivos a fin de interpretar y comprobar las hipótesis utilizando el programa estadístico Excel con el propósito de alcanzar las conclusiones y recomendaciones del estudio CÁPITULO V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 5.1. EDAD (E) Cuadro N° 6. Variable edad PORCENTAJE DE FRECUENCIA ÍTEMS Fi Fa FRECUENCIA APARENTE 1 MES - 4 MESES 34 68% 5 MESES - 8 MESES 12 24% 9 MESES - 12 MESES 4 8% N° 0.04 8% TOTAL 50 100%  33.3% EDAD Gráfico N°7. Variable edad Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN La edad determino que perros de 1-4 meses fue del 68% expresando una media de 33.3%, en proporción con estos datos la prevalencia aparente fue del 8% Benítez, J.2014. Frecuencia de alteraciones hematológicas en canes atendidos en clínicas veterinarias de la ciudad de Piura durante el periodo 2012-2013", de acuerdo a la edad oscilaron animales de 1 - 7 años el 54% en 401 perros En relación al resultado obtenido por Benítez, J. determina un porcentaje de edad superior, se concluye que varios son los factores que intervinieron como la nutrición, geriatría, estilo de vida y condición fisiológica 5.2. SEXO (S) Cuadro N° 7. Variable sexo PORCENTAJE DE FRECUENCIA ÍTEMS Fi Fa FRECUENCIA APARENTE MACHO 27 54% HEMBRA 23 46% N° 0.23 46% TOTAL 50 100%  50% SEXO Gráfico N° 8. Variable sexo Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN El sexo determinó que los machos fueron el 54% expresando una media del 50%; en simetría con estos datos la prevalencia aparente fue del 46% Cuno, J.2017. “Parámetros Hematológicos en perros juveniles de altura”, en cuanto al sexo, determino el 45.5% machos, en 40 canes En compensación al resultado obtenido por Cuno, J. estipulo que el porcentaje del sexo es inferior se deriva que varios son los elementos que influyeron como el estado fisiológico, geriatría, condición corporal, nutrición y raza 5.3. RAZA (R) Cuadro N° 8. Variable raza PORCENTAJE DE FRECUENCIA ITEM´S Fi Fa FRECUENCIA APARENTE CANICHE 10 20% PEKINÉS 9 18% SCHNAUZER 9 18% MESTIZO 7 14% HUSKY SIBERIANO 4 8% PITBULL 3 6% GOLDEN RETRIEVER 3 6% BULLDOG INGLES 3 6% COCKER 2 4% N° 0.02 4% TOTAL 50 100%  11.1% RAZA Gráfico N° 9. Variable raza Fuente: Investigación de campo 2021 Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN La raza determinó que el 20% fueron caniches expresando una media del 11.1%; en relación con estos datos la prevalencia aparente fue del 4 % Moyon, M. 2011. Evaluación de las alteraciones de los parámetros en hemograma y perfil hepático en distemper canino, de acuerdo a la raza de los animales el 78% corresponden a animales de raza pura y el 28% a animales mestizos en 50 perros El resultado obtenido por Moyon, M. señal un porcentaje superior; varios son los componentes que influyeron como la genética, geriatría, condición corporal 5.4. PESO (P) Cuadro N° 9. Variable Peso PORCENTAJE DE FRECUENCIA ÍTEMS Fi Fa FRECUENCIA APARENTE 2-4 Kg 25 50% 5-8 Kg 25 50% N° 0.25 50% TOTAL 50 100%  50 % PESO Gráfico N° 10. Variable peso Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN El peso determinó que el 50% presento pesos relativos de 2-4 Kg y 5-8 Kg, expresando una media del 50 %; en equivalencia con estos datos la prevalencia aparente fue del 50% Pedrozo, R. 2015. Valores hematológicos de referencia en caninos adultos aparentemente sanos que concurren a una clínica privada de Asunción de acuerdo al peso el 53% pesa menos de 10 Kg en 80 caninos En relación con el resultado obtenido por Pedrozo, R. determinó porcentaje superior en peso, se estableció que varios fueron los factores que influyeron como la edad, nutrición, sexo, raza, condición corporal, estado fisiológico y actividad de la mascota 5.5. CONDICIÓN CORPORAL (C/C) Cuadro N° 10. Variable condición corporal PORCENTAJE DE FRECUENCIA ITEM´S Fi Fa FRECUENCIA APARENTE 9/9 OBESO 1 2% N° 0.01 2% 7/9 PESADO 4 8% 5/9 IDEAL 4 8% 2/9 DELGADO 41 82% TOTAL 50 100%  25% CONDICIÓN CORPORAL Gráfico N° 11. Variable condición corporal Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN La condición corporal de los perros, determinó que el 86 % obtuvo una c/c delgado de 2/9, expresando una media del 25%; en proporción con estos datos la prevalencia aparente fue del 2% Izasa, D. 2015. Prevalencia de infección por hemoparasitos de caninos que fueron atendidos en una clínica veterinaria de la ciudad de Medellín, durante un promedio comprendido entre agosto de 2011 y julio 2013, menciona que el 23.6% obtuvo una C/C de 3 en 72 caninos En relación con el resultado obtenido por Izasa, D. determinó un porcentaje inferior en la condición corporal, varios fueron los factores que influyeron como la edad, raza, nutrición, estado fisiológico, actividad de la mascota y factores ambientales 5.6. TIPO DE ALIMENTO (TA) Cuadro N° 11. Variable tipo de alimento PORCENTAJE DE FRECUENCIA ITEM´S Fi Fa FRECUENCIA APARENTE BALANCEADO 15 30% MIXTA 11 22% N° 0.11 22% CASERA 24 48% TOTAL 50 100%  33.3% TIPO DE ALIMENTO Gráfico N° 12. Variable tipo de alimento Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN El tipo de alimento en los perros, determinó que el 48% se alimenta de comida casera, expresando una media del 33.3%; en proporción con estos datos la prevalencia aparente fue del 22% Sacatoro, L. 2019. Determinación de valores séricos y factores asociados en (Canis familiaris) en el barrio San Agustín de la parroquia Mulalo menciono que el 87.5% recibe alimentación casera en 75 caninos En comparación al resultado obtenido por Sacatoro, L. estableció un alcance superior donde estableció que varios fueron los factores como la composición nutricional, palatabilidad y consistencia del alimento 5.7. CONSTANTES FISIOLÓGICAS (C/F) Cuadro N°12. Variable constantes fisiológicas Número de pacientes Temperatura FC /lpm FR/rpm TLLC 1 38 120 18 2 1 38 120 18 2 1 38 120 18 2 1 38 120 18 2 1 38 120 18 2 1 38 123 20 2 1 38 123 20 2 1 38 128 20 2 1 38 128 20 2 1 38 128 20 2 1 38 128 20 2 1 39 128 20 2 1 39 128 20 2 1 39 135 20 2 1 39 135 20 2 1 39 135 20 2 1 39 135 20 2 1 39 135 20 2 1 39 135 20 2 1 39 142 20 2 1 39 142 20 2 1 39 142 20 3 1 39 142 20 3 1 39 142 20 3 1 39 142 20 3 1 39 142 23 3 1 39 142 23 3 1 39 145 23 3 1 39 145 23 3 1 39 145 23 3 1 39 145 25 3 1 39 145 25 3 1 39 145 25 3 1 39 147 26 3 1 39 147 26 3 Número de pacientes Temperatura FC /lpm FR/rpm TLLC 1 39 149 27 3 1 39 149 27 3 1 39 149 27 3 1 39 149 27 3 1 39 149 27 3 1 39 149 29 3 1 39 149 29 3 1 39 153 29 3 1 39 157 30 3 1 39 157 30 3 1 39 157 30 3 1 39 157 30 3 1 39 157 30 3 1 39 157 30 3 Promedio 39 140 23 3 Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN Las contantes fisiológicas de los caninos establecieron un rango de temperatura de 39 °C, frecuencia cardiaca de 140 lpm, frecuencia respiratoria 23 rpm y tiempo de llenado capilar 3 segundos en 50 perros (Baquero, 2012) Determinación de las constantes fisiológicas en perros en los cantones Guaranda, Chimbo y San Miguel menciono que la temperatura es de 38.5ºC, frecuencia cardiaca es de 95 lpm, frecuencia respiratoria de 23 rpm en 120 perros En comparación al resultado obtenido por (Baquero, 2012) estableció un alcance inferior donde estableció que varios fueron los factores a intervenir como la edad, sexo, actividad física, dolor, fármacos administrados y fiebre 5.8. ANÁLISIS HEMOGRAMA (AH) Cuadro N° 13. Variable análisis hemograma Número de pacientes Numero de muestra HCT HGB RBC VCM MCHC 1 194 24,7 77 3,65 67,7 311 1 195 24 76 3,55 67,7 316 1 197 22,7 67 3,66 62,1 294 1 198 22,9 71 3,91 58,7 310 1 199 22 67 3,5 62,4 305 1 200 23 71 3,9 58,7 307 1 201 36,2 114 5,9 60,9 315 1 202 22,2 69 3,8 58,5 312 1 203 35,4 111 5,4 64,7 312 1 204 29,2 92 4,34 67,4 317 1 205 28,2 87 4,61 62,2 308 1 206 24,1 83 4,3 55,4 344 1 207 17,5 53 2,8 61,4 300 1 208 22,9 74 3,7 61,8 325 1 209 31,7 97 4,8 66 307 1 210 26,1 84 3,9 67 322 1 211 19,8 62 3,2 62 314 1 212 27,5 82 4,6 59 299 1 213 22,5 73 3,6 61,5 324 1 215 46 150 6,9 66,4 325 1 216 25,7 85 4,3 60,9 318 1 217 24 79 3,4 69,7 329 1 218 27,4 88 3,9 68,8 321 1 219 25,4 83 3,7 68,5 328 1 220 20,5 68 3,27 62,6 330 1 221 27,6 87 4,1 66,9 316 1 222 32,4 105 4,9 65,4 323 1 223 23 73 3,4 66 316 1 224 33,5 103 4,8 68,4 307 1 225 29,9 91 4,5 65,3 303 1 226 32,3 106 5,2 61,9 329 1 227 28,7 93 4,2 66,9 326 1 228 22,2 67 3,6 61,6 304 1 229 26,4 88 3,7 69,9 333 1 230 44 157 6,2 71 358 1 231 25,2 79 3,7 68,8 312 1 232 42,7 155 6,06 70,5 363 1 5 26,8 108,6 3,9 67 320 Número de pacientes Numero de muestra HCT HGB RBC VCM MCHC 1 6 25,9 108,7 3,37 77 335 1 12 20,1 106,8 2,6 72 336 1 13 41,7 109,8 9,79 66 307 1 14 26,6 108,9 4,1 64 336 1 16 65,9 192 8,4 78 291 1 18 16,3 104,9 2,3 70 200 1 19 21,5 104,7 3,4 62 219 1 20 73,3 105,9 10,5 69 281 1 21 24,8 8,3 3,5 70 33,4 1 22 11,6 103,9 1,86 62 336 1 23 31,2 102 4,05 77 326 1 24 30,1 103 8,95 76 391 VALORES REFERENCIALES 39-56 110-190 5.5-8.5 62-72 300-380 UNIDADES % g/L 10^12/L Fl g/L Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN El hemograma en los perros, determinó que el 74% presenta anemia, expresando una media del 50 %; en proporción con estos datos la prevalencia aparente fue del 52% Castillo, S. 2017. Evaluación de la prevalencia de Ehrlichia Canis y alteraciones hematológicas asociadas , en caninos atendidos en clínica veterinaria Doctor Roger Alfaro en San José , Costa Rica, periodo 2015-2016 hace referencia que el 57% presenta anemia en 69 caninos En comparación al resultado obtenido por Castillo, S. determinó una proporción inferior, varios fueron los factores como la raza, nutrición, condición corporal, sexo, edad, patologías, estilo de vida e inmunización de vacunas y desparasitación 5.9 TIPOS DE ANEMIA (T/A) Cuadro N° 14. Variable tipos de anemia PORCENTAJE DE FRECUENCIA ITEM´S Fi Fa FRECUENCIA APARENTE NORMOCÍTICA NORMOCRÓMICA 34 92% MACROCITICA NORMOCRÓMICA 2 5% MICROCITICA HIPOCROMICA 1 3% N° 0.01 2% TOTAL 37 74%  33% TIPOS DE ANEMIA Gráfico N° 13. Variable tipos de anemia Fuente: Investigación de campo 2021 Elaborado por: Gissela Jessica Canchala Montenegro ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN El tipo de anemia en los perros, determinó que el 68% presenta una anemia normocítica normocrómica, expresando una media del 33%; en proporción con estos datos la prevalencia aparente fue del 2 % Aguilar, F. 2019. Evaluación de los cambios hematológicos presentados en caninos con tumores cutáneos sometidos a tratamientos en la ciudad de Machala, menciona que el 85.7 % presento anemia normocítica normocrómica en 7 caninos En comparación al resultado obtenido por Aguilar, F. determinó una proporción superior, varios fueron los factores como problemas relacionados con la alimentación, edad, raza, sexo, condición corporal y patologías VI. COMPROBACIÓN DE HIPÓTESIS De acuerdo con los resultados estadísticos obtenidos se comprobó la hipótesis alterna, determinación de la importancia de la biometría hemática en los diferentes tipos de anemia, en caninos en la ciudad de Riobamba; estableciendo casos confirmados de tipos de anemias mediante el análisis de sangre, que influenció estadísticamente sobre las variables evaluadas a través del tiempo de la investigación VII. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 7.1. CONCLUSIONES De acuerdo con los resultados y análisis estadísticos, se sintetizan las siguientes conclusiones: · Se establece confirmar valores referenciales en el hemograma, para poder interpretar resultados y obtener un diagnostico especifico en los diferentes tipos de anemias en 50 canes en estudio · En cuanto a la edad, los animales más susceptibles determino 1-4 meses 68% · Con relación al sexo los machos representan el 54% y hembras 46% de los casos clínicos · En concordancia la raza se estipulo el 20% caniche · Se estableció que el peso de los caninos de 2-4 kg y 5-8 kg el 50% · En cuanto a la condición corporal determinó 2/9 delgado 86% · En relación al tipo de alimento estableció el 48 % de comida casera · Las constantes fisiológicas estableció promedios de temperatura 39ºC,frecuencia cardiaca 140 lpm, frecuencias respiratoria 33 rpm y llenado capilar 3 segundos · Los resultados del análisis del hemograma (serie roja) determinó que el 74% presentó anemia · En relación al tipo de anemia el 68% se diagnosticó anemia normocítica normocrómica · Los resultados de esta investigación, permite deducir la importancia de los valores hematológicos de la serie roja (recuento total de glóbulos rojos, hematocrito, hemoglobina) en los diferentes tipos de anemia; las causas probables serian alimentación deficiente, patologías subclínicas, deficiencia de hierro y otros 7.2. RECOMENDACIONES. Como resultado de esta investigación, se sugieren las siguientes recomendaciones: · Realizar hemogramas completos para determinar la línea roja, blanca y plaquetas para una mejor interpretación de resultados y diagnóstico · Establecer el tratamiento de anemia previo a los exámenes de laboratorio ya que se dan alteraciones por deficiencia de diferentes elementos ,hierro, cobalto ,cobre y vitamina B12 · Emplear frotis sanguíneos en caso de presentar anemia con el objetivo de determinar las características celulares de los eritrocitos que nos ayudaran identificar mejor las alteraciones de estas células · Ejecutar un plan diagnóstico completo utilizando varios métodos como es el Ecop el cual nos ayuda a llegar de una forma más efectiva para diagnosticar enfermedades clínicas y subclínicas de esta manera poder solicitar ayudas diagnosticas complementarias BIBLIOGRAFÍA 1. AGUIRRE, J. 2015. Diagnóstico de babesiosis en perros (Canis familiaris) en la ciudad de yantzaza. 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Cambios hematológicos en Canis lupus familiaris positivos a Babesia spp., atendidos en la veterinaria Dr. Pet ubicada en la ciudad de Guayaquil. Obtenido de http://201.159.223.180/bitstream/3317/7726/1/T-UCSG-PRE-TEC-CMV-23.pdf 53.YANQUI, B. 2018. “Determinación de parámetros hematológicos en gatos domesticos (Felis catus) en el altiplano. Obtenido de http://repositorio.unap.edu.pe/bitstream/handle/UNAP/10561/Yanqui_Herencia_Beatriz_Lizbeth.pdf?sequence=1&isAllowed=y 54.ZARATE. 2016. Obtenido de http://repositorio.ucsg.edu.ec/bitstream/3317/7726/1/T-UCSG-PRE-TEC-CMV-23.pdf 55.Zulmi, R. 2018. Determinación de valores hematológicos referenciales en felis catus adultos en la ciudad de trujillo, 2016 . Obtenido de http://repositorio.upao.edu.pe/bitstream/20.500.12759/5783/1/REP_MED.VETE_ZULMI.OLANO_DETERMINACI%c3%93N.VALORES.HEMATOL%c3%93GICOS.REFERENCIALES.FELIS.CATUS.ADULTOS.CIUDAD.TRUJILLO.2016.pdf ANEXOS ANEXO 1. Ubicación del proyecto de Investigación. GPS Latitud -1.67098 Longitud -78.64711 ANEXO 2. Base de datos UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS, RECURSOS NATURALES Y DEL AMBIENTE ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA N PERROS Variable 1 Variable 2 Variable 3 Variable 4 Variable 5 Variable 6 C/F E S R P C/C T TEM F/C F/R TLLC 194 1-4 meses Macho Mestizo 2-4 Kg 2/9 Balanceado 38 120 18 2 204 1-4 meses Hembra Mestizo 2-4 Kg 2/9 Balanceado 38 120 18 2 232 1-4 meses Macho Mestizo 2-4 Kg 7/9 Balanceado 38 120 18 2 213 1-4 meses Hembra Mestizo 2-4 Kg 2/9 Balanceado 38 120 18 2 224 1-4 meses Hembra Mestizo 2-4 Kg 2/9 Balanceado 38 120 18 2 231 1-4 meses Macho Mestizo 2-4 Kg 2/9 Balanceado 38 123 20 2 210 1-4 meses Hembra Mestizo 2-4 Kg 2/9 Balanceado 38 123 20 2 1004 1-4 meses Hembra Caniche 2-4 Kg 2/9 Balanceado 38 128 20 2 1018 1-4 meses Hembra Caniche 2-4 Kg 5/9 Balanceado 38 128 20 2 1027 1-4 meses Macho Caniche 2-4 Kg 5/9 Balanceado 38 128 20 2 1032 1-4 meses Hembra Caniche 2-4 Kg 7/9 Balanceado 38 128 20 2 N PERROS Variable 1 Variable 2 Variable 3 Variable 4 Variable 5 Variable 6 TEM F/C F/R TLLC E S R P C/C T/A 1020 1-4 meses Hembra Caniche 2-4 Kg  2/9  Balanceado 39 128 20 2 228 1-4 meses Macho Caniche 2-4 Kg 2/9   Balanceado 39 128 20 2 223 1-4 meses Macho Caniche 2-4 Kg  2/9  Balanceado 39 135 20 2 212 1-4 meses Hembra Caniche 2-4 Kg  2/9  Balanceado 39 135 20 2 203 1-4 meses Hembra Caniche 2-4 Kg  2/9  Casera 39 135 20 2 1029 1-4 meses Hembra Caniche 2-4 Kg  5/9 Casera 39 135 20 2 195 1-4 meses Hembra Pekinés 2-4 Kg 2/9  Casera 39 135 20 2 218 1-4 meses Hembra Pekinés 2-4 Kg 2/9   Casera 39 135 20 2 1031 1-4 meses Hembra Pekinés 2-4 Kg 7/9 Casera 39 142 20 2 1039 1-4 meses Macho Pekinés 2-4 Kg  2/9  Casera 39 142 20 2 1041 1-4 meses Hembra Pekinés 2-4 Kg 2/9   Casera 39 142 20 3 222 1-4 meses Hembra Pekinés 2-4 Kg  2/9  Casera 39 142 20 3 207 1-4 meses Macho Pekinés 2-4 Kg 2/9   Casera 39 142 20 3 198 1-4 meses Macho Pekinés 2-4 Kg 2/9  Casera 39 142 20 3 209 1-4 meses Macho Pekinés 5-8 Kg  2/9  Casera 39 142 23 3 220 1-4 meses Macho Schnauzer 5-8 Kg  2/9  Mixta 39 142 23 3 199 1-4 meses Macho Schnauzer 5-8 Kg 2/9  Mixta 39 145 23 3 216 1-4 meses Macho Schnauzer 5-8 Kg  2/9  Mixta 39 145 23 3 225 1-4 meses Macho Schnauzer 5-8 Kg 2/9   Mixta 39 145 23 3 211 1-4 meses Hembra Schnauzer 5-8 Kg 2/9   Mixta 39 145 25 3 226 1-4 meses Macho Schnauzer 5-8 Kg 2/9   Mixta 39 145 25 3 229 1-4 meses Macho Schnauzer 5-8 Kg 2/9   Mixta 39 145 25 3 217 1-4 meses Hembra Schnauzer 5-8 Kg 2/9   Mixta 39 147 26 3 N PERROS Variable Variable 2 Variable 4 Variable 5 Variable 6 C/F E S R P C/F T/A TEMP F/C F/R TLLC 221 5-8 meses Macho Schnauzer 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 147 26 3 197 5-8 meses Macho Pitbull 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 147 26 3 205 5-8 meses Macho Pitbull 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 149 27 3 206 5-8 meses Macho Pitbull 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 149 27 3 200 5-8 meses Hembra Golden R 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 149 27 3 227 5-8 meses Hembra Golden R 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 149 27 3 1033 5-8 meses Macho Golden R 5-8 Kg 9/9 Mixta 39 149 27 3 219 5-8 meses Macho Cocker S 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 149 29 3 1009 5-8 meses Hembra Cocker S 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 149 29 3 208 5-8 meses Macho Husky S 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 153 29 3 201 5-8 meses Macho Husky S 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 157 30 3 202 5-8 meses Hembra Husky S 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 157 30 3 1017 9-12 meses Macho Husky S 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 157 30 3 215 9-12 meses Macho Bull dog ingles 5-8 Kg 2/9 Mixta 39 157 30 3 230 9-12 meses Macho Bull dog ingles 5-8 Kg 7/9 Mixta 39 157 30 3 1022 9-12 meses Macho Bull dog ingles 5-8 Kg 5/9 Mixta 39 157 30 3 ANEXO 3. Condición corporal ANEXO 4. Hemograma HCT: Hematocrito HGB: Hemoglobina RBC: Recuento total de hematíes VCM: Volumen corpuscular medio CHCM: Concentración de hemoglobina corpuscular media N DE PACIENTES N DE MUESTRA HCT HGB RBC VCM CHCM TIPOS DE ANEMIA 1 194 25 77 4 68 311 Normocítica Normocrómica 1 195 24 76 4 68 316 Normocítica Normocrómica 1 197 23 67 4 62 294 Sin anemia 1 198 23 71 4 69 310 Normocítica Normocrómica 1 199 22 67 4 62 305 Normocítica Normocrómica 1 200 23 71 4 69 307 Normocítica Normocrómica 1 201 36 114 6 61 315 Normocítica Normocrómica 1 202 22 69 4 69 312 Normocítica Normocrómica 1 203 35 111 5 65 312 Normocítica Normocrómica 1 204 29 92 4 67 317 Normocítica Normocrómica N DE PACIENTES N DE MUESTRA HCT HGB RBC VCM CHCM TIPOS DE ANEMIA 1 205 28 87 5 62 308 Normocítica Normocrómica 1 206 24 83 4 65 344 Normocítica Normocrómica 1 207 18 53 3 67 300 Normocítica Normocrómica 1 208 23 74 4 68 325 Normocítica Normocrómica 1 209 32 97 5 66 307 Normocítica Normocrómica 1 210 26 84 4 67 322 Normocítica Normocrómica 1 211 20 62 3 62 314 Normocítica Normocrómica 1 212 28 82 5 59 299 Microcitica Hipocromica 1 213 23 73 4 68 324 Normocítica Normocrómica 1 215 46 150 7 66 325 Sin anemia 1 216 26 85 4 61 318 Si anemia 1 217 24 79 3 70 329 Normocítica Normocrómica 1 218 27 88 4 69 321 Normocítica Normocrómica N DE PACIENTES N DE MUESTRA HCT HGB RBC VCM CHCM TIPOS DE ANEMIA 1 219 25 83 4 69 328 Normocítica Normocrómica 1 220 21 68 3 63 330 Normocítica Normocrómica 1 221 28 87 4 67 316 Normocítica Normocrómica 1 222 32 105 5 65 323 Normocítica Normocrómica 1 223 23 73 3 66 316 Normocítica Normocrómica 1 224 34 103 5 68 307 Normocítica Normocrómica 1 225 30 91 5 65 303 Normocítica Normocrómica 1 226 32 106 5 62 329 Sin anemia 1 227 29 93 4 67 326 Normocítica Normocrómica 1 228 22 67 4 62 304 Sin anemia 1 229 26 88 4 70 333 Normocítica Normocrómica 1 230 44 157 6 71 358 Sin anemia 1 231 25 79 4 69 312 Normocítica Normocrómica 1 232 43 155 6 71 363 Sin anemia N DE PACIENTES N DE MUESTRA HCT HGB RBC VCM CHCM TIPOS DE ANEMIA 1 5 27 109 4 67 320 Normocítica Normocrómica 1 6 26 109 3 77 335 Macrocitica Normocrómica 1 12 20 107 3 72 336 Normocítica Normocrómica 1 13 42 110 10 66 307 Sin anemia 1 14 27 109 4 64 336 Normocítica Normocrómica 1 16 66 192 8 78 291 Sin anemia 1 18 16 105 2 70 200 Sin anemia 1 19 22 105 3 62 219 Sin anemia 1 20 73 106 11 69 281 Sin anemia 1 21 25 8 4 70 33,4 Normocítica Normocrómica 1 22 12 104 2 62 336 Normocítica Normocrómica 1 23 31 102 4 77 326 Macrocitica Normocrómica 1 24 30 103 9 76 391 Sin anemia VALORES REFERENCIALES   39-56 110-190 5.5-8.5 62-72 300-380 UNIDADES   % g/L 10^12/L Fl g/L VALORES DE HEMATOCRITO VALORES DE HEMOGLOBINA VALORES DE RECUENTO DE GLÓBULOS ROJOS VALOR VOLUMEN CORPUSCULAR MEDIO VALORES DE CONCENTRACIÓN MEDIA DE HEMOGLOBINA ANEXO 5. Historia clínica Ficha N°1 UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS RECURSOS NATURALES Y DEL AMBIENTE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA N de historia clínica 209 Fecha de admisión: 22/04/21 Hora: 9:00 am Propietario: Édison Páez Dirección: Riobamba Teléfono/Celular : 0991845000 Datos de la mascota Nombre: Chester Especie: Canina Raza: Pekinés Sexo: Macho Peso: 5.3 Kg Edad: 3 Meses Condición corporal: 2/9 Alimentación: Casera Constantes fisiológicas F.Respiratoria: 23 rpm F.cardiaca: 142 lpm Temperatura: 38.9 TLLC: 3 seg Ficha N° 2 UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS RECURSOS NATURALES Y DEL AMBIENTE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA N de historia clínica 210 Fecha de admisión: 22/04/21 Hora: 9:00 AM Propietario: Daysi López Dirección: Riobamba Teléfono/Celular: 0965100368 Datos de la mascota Nombre: Chiky Especie: Canina Raza: Mestiza Sexo: Hembra Peso: 2.9 Kg Edad: 2 Meses Condición corporal: 2/9 Alimentación: Balanceado Constantes fisiológicas F.Respiratoria: 20 rpm F.cardiaca: 123 lpm Temperatura: 38.3 TLLC: 2 seg Ficha N° 3 UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS RECURSOS NATURALES Y DEL AMBIENTE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA N de historia clínica 212 Fecha de admisión: 22/04/21 Hora: 9:00 am Propietario: Andrea Cerón Dirección: Riobamba Teléfono/Celular: 0997728047 Datos de la mascota Nombre: Pelusa Especie: Canina Raza: Caniche Sexo: Hembra Peso: 3.2 Kg Edad: 3Meses Condición corporal: 2/9 Alimentación: Balanceado Constantes fisiológicas F.Respiratoria: 20 rpm F.cardiaca: 135 lpm Temperatura: 38.5 TLLC: 2 seg Ficha N°4 UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS RECURSOS NATURALES Y DEL AMBIENTE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA N de historia clínica 215 Fecha de admisión: 26/04/21 Hora: 9:30 am Propietario: Miguel Cevallos Dirección: Riobamba Teléfono/Celular: 0984567239 Datos de la mascota Nombre: Tommy Especie: Canina Raza: Bulldog Sexo: Macho Peso: 8.8 kg Edad:12Meses Condición corporal: 2/9 Alimentación: Mixta Constantes fisiológicas F.Respiratoria: 30 rpm F.cardiaca: 157 lpm Temperatura: 39.4 TLLC: 3 seg Ficha N°5 UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS RECURSOS NATURALES Y DEL AMBIENTE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA N de historia clínica 219 Fecha de admisión: 26/04/21 Hora: 10:00 am Propietario: Mónica Revelo Dirección: Riobamba Teléfono/Celular: 0995710812 Datos de la mascota Nombre: Coffe Especie: Canina Raza: Cocker Sexo: Macho Peso: 6.9 Kg Edad: 6 Meses Condición corporal: 2/9 Alimentación: Mixta Constantes fisiológicas F.Respiratoria: 29 rpm F.cardiaca: 149 lpm Temperatura: 39 TLLC: 3 seg ANEXO 6. Hemogramas Hemograma N°1 Hemograma N°2 Hemograma N°3 Hemograma N°4 Hemograma N°5 ANEXO 7. Fotos miembros del tribunal del proyecto de investigación Srta.: Gissela Jessica Canchala Montenegro EGRESADA Dr. Washington Rolando Carrasco Mancero. MSc DIRECTOR Dr. Luis Xavier Salas Mujica. MSc ÁREA DE BIOMETRÍA Dr. Washington Rolando Carrasco Mancero. MSc ÁREA DE REDACCIÓN TÉCNICA ANEXO 8. Fotos de la visita virtual del trabajo de campo Colocación de muestra Toma de muestra Preparación del paciente Toma de constantes fisiológicas Lectura del hemograma impreso Colocación de muestra en tubos EDTA Lectura del resultado del hemograma digital Ingreso de datos en la Vetscam Hm5 Serie 1 8 1 ME S -4 MESES 5 MESES - 8 MESES 9 MESES-12 MESES 68 24 4 Porcentaje % Serie 1 [VALOR] [VALOR] [VALOR] MACHO HEMBRA 54 46 Porcentaje % Serie 1 18 4 CANICHE PEKINES SCHNAUZER MESTIZO HUSKY SIBERIANO PITBULL GOLDEN RETRIEVER BULL DOG INGLES COCKER 20 18 18 14 8 6 6 6 4 Porcentaje % Serie 1 [VALOR] [VALOR] 25 2-4 Kg 5-8 kg 50 50 Porcentaje % Serie 1 [VALOR] [VALOR] [VALOR] 2/9 DELGADO 5/9 IDEAL 7/9 PESADO 9/9 OBESO 82 8 8 2 Porcentaje % Serie 1 [VALOR] [VALOR] 22 CASERA BALANCEADO MIXTA 48 30 22 Porcentaje % Serie 1 [VALOR] [VALOR] 5 NORMOCITICA NORMOCROMICA MACROCITICA NORMOCROMICA MICROCITICA HIPOCROMICA 92 5 3 Porcentaje % Hemoglobina VALOR DE REFERENCIA 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 110 HEMOGLOBINA 77 76 67 71 67 71 114 69 111 92 87 83 53 74 97 84 62 82 73 150 85 79 88 83 68 87 105 73 103 91 106 93 67 88 157 79 155 108.6 108.7 106.8 109.8 108.9 192 104.9 104.7 105.9 8.3000000000000007 103.9 102 103 Recuento de Globulos rojos VALOR DE REFERENCIA 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 5.5 RBC 3.65 3.55 3.66 3.91 3.52 3.96 5.94 3.8 5.48 4.34 4.6100000000000003 4.34 2.86 3.7 4.8 3.9 3.2 4.66 3.66 6.94 4.38 3.45 3.98 3.71 3.27 4.12 4.95 3.48 4.8899999999999997 4.58 5.22 4.29 3.61 3.78 6.2 3.77 6.06 3.99 3.37 2.62 4.79 4.1399999999999997 8.41 2.33 3.46 10.57 3.54 1.86 4.05 3.95 VCM VALOR DE REFERE NCIA 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 62 VCM 67.7 67.7 62.1 58.7 62.4 58.7 60.9 58.5 64.7 67.400000000000006 62.2 55.4 61.4 61.8 66 67 62 59 61.5 66.400000000000006 60.9 69.7 68.8 68.5 62.6 66.900000000000006 65.400000000000006 66 68.400000000000006 65.3 61.9 66.900000000000006 61.6 69.900000000000006 71 68.8 70.5 67 77 72 66 64 78 70 62 69 70 62 77 76 CHCM VALOR DE REFER ENCIA 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 300 CHCM 311 316 294 310 305 307 315 312 312 317 308 344 300 325 307 322 314 299 324 325 318 329 321 328 330 316 323 316 307 303 329 326 304 333 358 312 363 320 335 336 307 336 291 200 219 281 33.4 336 326 391 image2.png image3.png image4.png image5.png image50.png image6.png image7.png image8.png image9.png image10.png image11.png image12.png image13.png image14.png image15.png image16.emf image17.jpeg image18.png image19.png image20.png image21.jpeg image22.jpeg image23.jpeg image24.jpeg image25.jpeg image26.jpeg image27.jpeg image28.jpeg image29.png image30.png image31.png image32.png image33.jpeg image34.jpeg image35.jpeg image36.jpeg image37.jpeg image1.png