UNIVERSIDAD ESTATAL DE BOLÍVAR Facultad de Ciencias Agropecuarias, Recursos Naturales y del Ambiente Carrera de Medicina Veterinaria Tema: EVALUACIÓN DE UN PROTOCOLO ANESTÉSICO BASADO EN KETAMINA Y DEXMEDETOMIDINA EN CONEJOS (Oryctolagus cunículus). Proyecto de Investigación previo a la obtención del título de Médico Veterinario, otorgado por la Universidad Estatal de Bolívar a través de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, Recursos Naturales y del Ambiente, Carrera de Medicina Veterinaria. Autor: Oscar Alexander Aroca Naula Tutor: Dr. Washington Fernando Carrasco Sangache PhD. Guaranda – Ecuador 2025 VI DEDICATORIA A Dios, por darme la vida y permitirme culminar mi carrera con éxito, además de la oportunidad de estudiar esta maravillosa carrera. A mi padre Oscar por brindarme su apoyo incondicional durante toda mi formación académica, el cual siempre estuvo a mi lado brindándome su amor, apoyo y fortaleza, y sobre todo a mi ángel que se encuentra cuidándome desde el cielo el cual ha sido mi motivación para lograr mis metas. A mi prima Lissette quien es como una hermana para mí, agradecerle por siempre estar a mi lado, incluso en los momentos más difíciles, siendo un apoyo fundamental en mi vida. Oscar Alexander Aroca Naula VII AGRADECIMIENTO Agradezco a Dios por darme salud y sabiduría durante toda mi formación académica, y por la oportunidad de lograr todos los objetivos planteados en mi vida. A mi padre Oscar, por ser el mayor ejemplo en mi vida, gracias por tu sacrifico y tu apoyo incondicional, gracias por ser esa gran ser humano que con tus enseñanzas has hecho de tu hijo alguien mejor día con día. Agradezco a toda mi familia, por ser parte fundamental en mi vida, gracias por sus consejos y enseñanzas este logro es tanto suyo como mío. A mi tutor de tesis, Dr. Fernando Carrasco por su guía constante, su paciencia y su experiencia que ha sido fundamental para llevar a cabo esta investigación. A la Dra. Jenny Lozada por abrirme las puertas de su clínica veterinaria, agradecerle por su colaboración y apoyo para que este proyecto llegue a su culminación de la mejor manera. A la memoria de mi mamita Nery Naula, que ha sido una fuente constante de inspiración y motivación en mi vida, sé que desde el cielo estas muy orgullosa de mí. A cada uno de ustedes les dedico con mucho amor este trabajo de investigación. Oscar Alexander Aroca Naula VIII ÍNDICE DE CONTENIDO CONTENIDO Pag CAPÍTULO I 1 1.1 INTRODUCCIÓN 1 1.2. PROBLEMA 2 1.3. OBJETIVOS 3 1.3.1. Objetivo General 3 1.3.2. Objetivos Específicos 3 1.4. HIPÓTESIS 4 CAPÍTULO II 5 2.1. MARCO TEÓRICO 5 2.1.1. El conejo 5 2.1.2. Parámetros fisiológicos 5 2.1.3. Anestesia 6 2.1.4. Consideraciones anestésicas 6 2.1.5. Tipos de anestesia en conejos 9 2.1.6. Anestesia inhalatoria 10 2.1.7. Anestesia Total Intravenosa (TIVA) 10 2.1.8. Anestesia inyectable 11 2.1.9. Ketamina 11 2.1.10. Farmacocinética 12 2.1.11. Farmacodinamia 12 2.1.11. Posología 13 2.1.12. Dexmedetomidina 13 2.1.13. Farmacocinética 14 2.1.14. Farmacodinamia 14 2.1.15. Posología 15 2.1.16. Monitoreo Anestésico 15 2.1.17. Color de las membranas mucosas 16 2.1.18. Tiempo de llenado capilar 16 2.1.19. Efecto anestésico 16 2.1.19. Profundidad Anestésica 17 IX 2.1.20. Frecuencia cardíaca 18 2.1.21. Frecuencia respiratoria 18 2.1.22. Saturación de oxígeno 19 2.1.23. Temperatura 19 CAPÍTULO III 20 3.1. MARCO METODOLÓGICO 20 3.1.1. Ubicación y características de la investigación 20 3.1.2. Situación geográfica y edafoclimática 20 3.1.3. Zona de vida 20 3.2. Metodología 20 3.2.1. Material en estudio 20 3.2.2. Factores en estudio 20 3.2.3. Tratamientos 21 3.2.4. Tipo de diseño experimental o estadístico 21 3.2.5. Manejo de la investigación 21 3.2.6. Métodos de evaluación 23 CAPÍTULO IV 25 4.1. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 25 4.2. INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS 25 4.2.1. Frecuencia Cardiaca 25 4.2.2. Frecuencia Respiratoria 26 4.2.3. Saturación de oxígeno 28 4.2.4. Temperatura rectal 29 4.2.5. Tiempo de efecto anestésico 30 4.2.6. Nivel y profundidad anestésica 31 CAPÍTULO V 34 5.1. Conclusiones y recomendaciones 34 5.1.1. Conclusiones 34 5.1.2. Recomendaciones 35 BIBLIOGRAFIA ¡Error! Marcador no definido. ANEXOS X ÍNDICE DE TABLAS No Detalle Pag 1 Clasificación del estado físico ASA 9 2 Escala de Aldrete: Recuperación post- anestésica 18 3 Definición de los estados anestésicos y escala numérica atribuida 19 4 Frecuencia cardíaca entre grupos anestésicos 25 5 Frecuencia respiratoria entre grupos anestésicos 26 6 Saturación de oxígeno entre grupos anestésicos 28 7 Temperatura rectal entre grupos anestésicos 29 8 Efecto anestésico entre grupos 30 9 Profundidad anestésica entre grupos 31 XI ÍNDICE DE FIGURAS No Detalle Pag 1 Frecuencia cardíaca entre grupos anestésicos 25 2 Frecuencia respiratoria entre grupos anestésicos 27 3 Saturación de oxígeno entre grupos anestésicos 28 4 Temperatura rectal entre grupos anestésicos 30 5 Efecto anestésico entre grupos 31 6 Profundidad anestésica entre grupos 32 XII ÍNDICE DE ANEXOS No Detalle 1 Mapa de ubicación de la investigación 2 Croquis del ensayo 3 Base de datos 4 Evidencia Fotograficas 5 Formatos de Fichas de recolección de datos 6 Glosario de términos técnicos XIII RESUMEN La investigación tuvo como objetivo evaluar un protocolo anestésico de ketamina y dexmedetomidina en conejos (Oryctolagus cuniculus), se seleccionó 20 animales adultos sanos, entre 6 meses a 1 año de edad, y se los dividió en dos grupos: protocolo de ketamina, midazolam, propofol y sevoflurano (KMPS), y el grupo correspondiente al protocolo de ketamina y dexmedetomidina (KD); en la cual se evaluó la frecuencia cardíaca, frecuencia respiratoria, saturación de oxígeno, temperatura rectal, efecto anestésico el cual se lo analizó mediante el uso de la escala de Aldrete de recuperación posanestésica, y finalmente el nivel de profundidad anestésica mediante la escala de estados anestésicos y escala atribuida. Los resultados mostraron que la frecuencia cardíaca mostró diferencia significativa entre ambos grupos en todos los minutos analizados, a diferencia de las variables frecuencia respiratoria, saturación de oxígeno, temperatura rectal y tiempo o efecto anestésico que no mostraron diferencia significativa entre ellos, finalmente la variable profundidad anestésica determinó que ambos protocolos anestésicos mantuvieron una anestesia quirúrgica tipo 4 en un 95% de un total de 20 conejos analizados. Po lo tanto se concluye que el grupo anestésico KD es seguro para ser utilizado como protocolo de anestesia en conejos, ya que las variables estudiadas y comparadas con el protocolo KMPS no presentaron riesgos que comprometieron la vida de los conejos anestesiado en la presente investigación. Palabras claves: Anestesia, ketamina, dexmedetomidina, constantes fisiológicas, efecto anestésico XIV SUMMARY The objective of the research was to evaluate an anesthetic protocol of ketamine and dexmedetomidine in rabbits (Oryctolagus cuniculus). Twenty healthy adult animals, between 6 months and 1 year of age, were selected and divided into two groups: a group as protocol of ketamine, midazolam, propofol and sevoflurane (KMPS), and group corresponding to the protocol of ketamine and dexmedetomidine (KD); in which heart rate, respiratory rate, oxygen saturation, rectal temperature, anesthetic effect were evaluated, which was analyzed using the Aldrete post-anesthetic recovery scale, and finally the level of anesthetic depth using the anesthetic states scale and the attributed scale. The results showed that the heart rate showed a significant difference between both groups in all the minutes analyzed, unlike the variables respiratory rate, oxygen saturation, rectal temperature and time or anesthetic effect that did not show a significant difference between them, finally the variable anesthetic depth determined that both anesthetic protocols maintained a type 4 surgical anesthesia in 95% of a total of 20 rabbits analyzed. Therefore, it is concluded that the anesthetic group KD is safe to be used as an anesthesia protocol in rabbits, since the variables studied and compared with the KMPS protocol did not present risks that compromised the life of the anesthetized rabbits in the present investigation. Keywords: Anesthesia, ketamine, dexmedetomidine, physiological constants, anesthetic effect 1 CAPÍTULO I 1.1 INTRODUCCIÓN A nivel mundial son múltiples los desafíos que representa la anestesia en conejos (Oryctolagus cuniculus), ya que al ser mamíferos con tasas metabólicas elevadas y períodos anestésicos cortos, la anestesia se vuelva riesgosa en estos pacientes, y que al ser su presencia cada vez más frecuente en los centros veterinarios, el personal veterinario debe estar preparado para manejar de manera adecuada los protocolos anestésicos en ésta especie, como lo recalca (Cárdenas, 2019), para lo cual la aplicación de protocolos anestésicos seguros a realizarse en ésta especie, deben permitir disminuir los riesgos de mortalidad en la anestesia que representan de 6 a 8 veces mayor en comparación en perros y gatos (Sayce et al., 2020). En Ecuador los centros de atención veterinaria no siempre tienen la experiencia en el manejo de anestesia en los conejos (Oryctolagus cuniculus), por lo que es indispensable establecer procedimientos anestésicos seguros en la especie como lo menciona (Ventura, 2020), la ketamina y la dexmedetomidina son fármacos de amplio uso en medicina veterinaria por sus características deseables al momento de inducir anestesia en los animales, que permiten realizar desde contenciones hasta intervenciones quirúrgicas (van Zeeland y Schoemaker, 2021) La ketamina es un anestésico que se usa en conjunción con agonistas α 2 adrenérgicos como la dexmedetomidina que mejoran la relajación, profundidad anestésica, estabilizan la presión arterial, frecuencia cardíaca como lo detalla (Song et al., 2020), la dexmedetomidina es un fármaco que posee múltiples características al momento de realizar el procedimiento anestésico, además de ser un fármaco que se puede revertir , el cual acorta el periodo de recuperación anestésica que en estos pacientes es de gran importancia (Vennen y Mitchell, 2020). Por ello, la presente investigación tuvo como objetivo evaluar los efectos anestésicos sobre las constantes fisiológicas, efecto y profundidad anestésica del protocolo propuesto de ketamina y dexmedetomidina (KD) en conejos domésticos (Oryctolagus cuniculis) 2 1.2. PROBLEMA Los conejos como mascota han ganado popularidad por la crianza sencilla y económica que representan, es así que el conejo domestico es una de los animales más comercializados y de mayor frecuencia en las clínicas veterinarias, para que puedan ser atendidas en procedimientos como curación de heridas, recortes de dientes y esterilización, para lo cual deben ser anestesiados de manera segura, por lo tanto, la anestesia es una herramienta fundamental y necesaria para todo veterinario, sin embargo, cuando se trata de nuevos pacientes, como los llamados no convencionales, no todos los médicos tienen la experiencia en el uso de anestésicos y sedantes en los conejos, convirtiéndose en los protocolos usados en inseguros o poco efectivos. La atención veterinaria de los conejos como mascotas, se ha popularizado y se ha convertido en un reto importante para los médicos veterinarios, ya que al tratarse de animales nerviosos y de comportamiento anestésico diferente a las mascotas más comúnmente atendidas en la consulta veterinaria diaria, ha provocado dudas y recelo al momento de anestesiar buscando la ayuda de centros veterinarios con mayor experticia al trabajar con estas mascotas. Mundialmente los sedantes α 2 adrenérgicos son muy bien utilizados en varios animales domésticos como los perros y gatos, los estudios han demostrado que funcionan de manera segura al momento de producir anestesia, en el caso de conejos de manera especial las investigaciones son limitadas y los efectos anestésicos en ésta especie se presentan de manera diferente, ya que en ellos se activan las fibras vagales y simpáticas al mismo tiempo, produciendo una frecuencia cardíaca aparentemente normal, a diferencia de los perros y gatos que de inmediato se activan procesos compensatorios. Por ello, el presente trabajo de investigación se centró en elaborar un protocolo anestésico idóneo para el conejo (Oryctolagus cuniculus) el cual busca evaluar los efectos y la estabilidad anestésica de un protocolo propuesto de ketamina y dexmedetomidina evitando así los efectos no deseados y mejorando su bienestar tanto en la experimentación como para la clínica diaria. 3 1.3. OBJETIVOS 1.3.1. Objetivo General Evaluar un protocolo anestésico basado en ketamina y dexmedetomidina en conejos (Oryctolagus cuniculus). 1.3.2. Objetivos Específicos • Valorar el efecto de la ketamina y dexmedetomidina sobre las constantes fisiológicas en conejos. • Determinar el tiempo del efecto anestésico de un protocolo a base de ketamina y dexmedetomidina en conejos. • Determinar el nivel y profundidad de anestesia al utilizar ketamina y dexmedetomidina en conejos. 4 1.4. HIPÓTESIS H0: La aplicación de ketamina y dexmedetomidina como protocolo anestésico no presenta diferencias frente al grupo ketamina, midazolam, propofol y sevoflurano de anestesia en conejos. H1: La aplicación de ketamina y dexmedetomidina como protocolo anestésico presenta diferencias frente al grupo ketamina, midazolam, propofol y sevoflurano de anestesia en conejos 5 CAPÍTULO II 2.1. MARCO TEÓRICO 2.1.1. El conejo El conejo doméstico (Oryctolagus cunículus), que se originó en la Península Ibérica, en el sur de Francia y al norte de África, pertenece al orden: Lagomorpha, familia: leporidae, género: Oryctolagus, especie: Oryctolagus cuniculus L (Bobadilla et al , 2021). Los conejos representan una especie muy importante experimental, en pruebas rutinarias de diagnóstico beneficiando a los avances de la medicina veterinaria como a la salud humana, son una especie que se pueden manipular con facilidad y obtener accesos vasculares venosos y arteriales de manera rápida, no existen muchos estudios sobre estas especies en el tema de anestesia y los efectos en variables como la relajación, analgesia y anestesia (Nobre et al , 2022). 2.1.2. Parámetros fisiológicos Los conejos domésticos adultos tienen un peso dentro de un rango de 1 a 6 kg, pudiendo llegar a 10 Kg, la temperatura rectal oscila entre 38,5ºC a 40ºC así lo menciona (Ventura Mendiola de Rodriguez , 2020), la frecuencia cardiaca (Fc) varía entre 180 a 350 latidos por minuto (lpm) y finalmente mantiene una frecuencia respiratoria de 30 a 60 respiraciones por minuto (rpm) como lo detalla (Argente et al, 2019). Tienen una vida comprendida entre 5 a10 años, alcanzan la madurez sexual entre los 4-9 meses en hembras y hasta los 5-10 meses en los machos, la etapa estrogénica es de ovulación inducida, y mantienen una gestación entre 30-33 días, con parto de un total de 4 a 12, consumen una cantidad de 50 gramos/Kg de sus peso vivo, y mantienen un tránsito intestinal de aproximadamente 4 a 5 horas con respecto a las heces duras y 8 a 9 horas en el caso de los cecotrofos, finalmente excretan de 50 a 150 gramos de heces/Kg/día, mantienen un consumo de 50 a 150 ml de agua/Kg/peso, y eliminan de 10 a 35 ml de orina/kg/día (Cabrero Niubó y Riera Tort, 2008). 6 2.1.3. Anestesia El término anestesia se lo define como el estado de insensibilidad momentánea, producida por efecto de sustancias farmacológicas, la cual implica que existe la pérdida de la conciencia de manera transitoria, es así que de manera clásica la anestesia hoy en día debe mantener al menos tres cualidades importantes como son: analgesia, adecuada relajación muscular y anestesia profunda, que puede ser de tiempo corto o extendido, lo cual dependerá de los procedimientos quirúrgicos a realizarse como lo menciona (Rioja et al, 2022). Por lo tanto, el médico veterinario o médico veterinario anestesista debe disminuir al máximo los efectos indeseables de la anestesia, usando de manera adecuada los fármacos anestésicos, sedantes y analgésicos, además de planificar de manera óptima y adecuada la preanestesia, inducción, mantenimiento y postanestesia, evitando así cambios negativos sobre las constantes fisiológicas que pongan en riesgo la vida de los pacientes (Chae et al, 2021). La anestesia en mascotas exóticas es necesaria para algunos procedimientos quirúrgicos, así es que la selección del anestésico debe escogerse según el tipo de cirugía a realizarse, además los conejos se los puede inducir usando máscara de tipo facial o una cámara de inducción, y siempre se administrará o se preferirá utilizar medicamentos previos a la anestesia inhalatoria, ya que produce relajación para la intubación, se recomienda intubar a los conejos en toda anestesia general, ya que al suceder un paro respiratorio en ésta especie podrían no recuperarse y morir, por lo tanto la intubación permite tener mayor control sobre la anestesia implementada como lo detalla (Gardhouse & Sanchez, 2022), los conejos deben ser monitoreados de manera permanente durante la anestesia para lo cual se recomienda hacerlo con el uso de Doppler ultrasónico, electrocardiograma, y oxímetros de pulso para que se monitoree las frecuencias cardíaca, respiratoria, y la saturación de oxígeno (Vennen y Mitchell, 2020). 2.1.4. Consideraciones anestésicas La principal problemática en la anestesia para los conejos es su elevada tasa metabólica, lo cual reduce el tiempo anestésico, al reducir los tiempos de vida de 7 los fármacos, para lo cual se incrementa las dosis de medicamentos y se instaura nuevos protocolos para asegurar la vida del paciente, disminuyendo los riesgos cardiovasculares, respiratorios y de temperatura corporal, lo cual se comportan de manera diferente en animales de compañía como perros y gatos (Caldas, 2021). Dentro de las consideraciones anestésicas en conejos, se debe prestar especial atención en el examen clínico general, ya que al ser animales de mecanismos metabólicos diferentes a otras mascotas, un enfermedad intestinal sería gravísima y condicionaría al desarrollo de bacterias patógenas colonizadoras de estos animales, debido al retraso en el movimiento intestinal provocado por la anestesia, además se debe realizar exámenes complementarios, descartando así la presencia de enfermedades subclínicas presentes (Aricelli, 2022), también se evaluará el estado de las mucosas, la consistencia de las fecas y grado de hidratación del paciente (Vilcahuamán, 2018). Los conejos son animales nerviosos, por lo tanto, manejan niveles de estrés importantes al momento de la sujeción y manejo, para lo cual se recomienda llevarlos por lo menos una hora antes al ambiente hospitalario, ubicarlos en un área oscura, tranquila, sin presencia de sonidos fuertes, con lo cual se logra disminuir los signos de estrés, lo cual previene posibles problemas al momento de la instauración de la anestesia (Bennett & Lewis, 2022). Ayuno Preanestésico El ayuno preanestésico suele ser innecesario en los conejos, en esta especie no se producen vómitos durante la inducción anestésica, debido a sus características anatómico-fisiológicas por lo que se sugiere entonces evitar restricciones prolongas de alimentos sólidos y de líquidos según lo menciona (Techera, 2023), los conejos como los roedores tiene la capacidad de acumular comida además de fluidos dentro de la cavidad oral, para lo cual debemos ser minuciosos en la revisión antes de la anestesia (Corpas, 2016), según las investigaciones realizadas por (Bennett & Lewis, 2022) los ayunos en esta especie se recomiendan de dos horas, así se evitará la regurgitación pasiva de los alimentos, se disminuirá el volumen del gastrointestinal, además de la acumulación de comida en la cavidad oral. 8 Pre-Oxigenación La pre oxigenación en la anestesia en conejos es uno de los pasos más importantes a la hora de instaurar el protocolo anestésico, ésta reduce en gran medida los riesgos que se derivan de la inducción o el mantenimiento de la anestesia, la cual se la hará con el uso de una mascarilla facial (Páramo, 2022). Independientemente del método que se vaya a utilizar para entubar a los conejos previo la anestesia, se lo colocará en decúbito esternal, en donde el cuello y cabeza estarán extendidos dorsal y cranealmente, pero no tendrán una dirección vertical en su totalidad, se debe disponer de tubos endotraqueales sin manguito de medida comprendida entre 2 a 4.4 mm de diámetro, con la ayuda de un dispositivo supraglótico especial para conejos conocido como V Gel y una mascarilla facial ajustada al dispositivo, permite lograr una excelente monitorización de los pacientes (Scarabelli y Nardini, 2020). Valoración del ASA Una vez evaluado al paciente que será anestesiado, se procede a utilizar la clasificación de la Asociación Americana de Anestesiólogos (ASA), el cual califica el estado físico del paciente, es decir si este está apto o no para ingresar a cirugía. Lo cual dependerá de varios factores intrínsecos del paciente y otros factores externos como la experiencia del anestesiólogo y la duración de la anestesia como lo refiere (Otero, 2022). Es así que la sociedad norteamericana de Anestesiología (ASA) clasifica el estado físico del paciente de la siguiente forma: 9 Tabla 1. Clasificación del estado físico ASA ASA I Paciente sano II Paciente con enfermedad sistémica leve III Paciente con enfermedad sistémica grave IV Paciente con enfermedad sistémica grave con riesgo de muerte V Paciente moribundo que no sobrevivirá sin tratamiento E Emergencia 2.1.5. Tipos de anestesia en conejos En la actualidad no existe ningún fármaco anestésico que produzca los tres componentes necesarios para conseguir un estado de anestesia quirúrgica segura al 100%, por ello es necesario combinarlos, lo que se conoce como anestesia equilibrada o balanceada según lo detalla (Rioja et al., 2022). La anestesia equilibrada tiene la ventaja de reducir las dosis de algunos anestésicos, favoreciendo los efectos colaterales de los mismos como generando ahorro económico, la anestesia puede estar combinada por anestésicos que sean colocados intravenosa o de manera inhalatoria como lo menciona (Pavel et al., 2020), para la inducción y mantenimiento de la anestesia general en los conejos, por lo tanto el objetivo del procedimiento es el mantenimiento de las funciones vitales del paciente en estados fisiológicos normales, para lo cual es importante evitar planos anestésicos muy profundos que compliquen o arriesguen la vida del paciente (Escarramán et al., 2021). La anestesia general se suele clasificar en función del tipo de fármaco, método o vía de administración, la anestesia más utilizada en conejos se las clasifica en tres tipos principales: • Anestesia inhalatoria (AI) • Anestesia intravenosa total (AIT) 10 • Anestesia Inyectable (AI) 2.1.6. Anestesia inhalatoria La anestesia inhalatoria se utiliza comúnmente en la clínica diaria para el tratamiento anestésico de animales, la anestesia por inhalación ya sea con isoflurano o sevoflurano son absorbidos desde la pared interalveolar hacia la circulación sistémica donde posteriormente serán distribuidos por el organismo y eliminados principalmente por los pulmones (Camacho , 2020). La evolución de la anestesia inhalatoria ha estado marcada por la extensa búsqueda de anestésicos de acción rápida, corta duración y ausencia de toxicidad, es así que el sevoflurano, desflurano y más recientemente usado el xenón, los cuales permiten un mejor control hipnótico, recuperación de la conciencia y reflejos de manera más pronta (Claure, 2022). La anestesia por inhalación en conejos llevará el uso de una máscara facial o tubo endotraqueal, como herramientas de mayor practicidad al momento de plantear un protocolo de anestesia inhalatoria, puesto que son menos invasivas y requieren de menor destreza del operador y menor tiempo para instaurarlas. Se ha sugerido que la intubación endotraqueal es una ventaja en la especie porque la respiración puede ser soportada manualmente (Vilcahuamán, 2018) 2.1.7. Anestesia Total Intravenosa (TIVA) La anestesia total intravenosa (TIVA) implica el uso de fármacos inyectables en forma de infusiones continuas o de velocidad constante para proporcionar analgesia equilibrada y un estado de inconsciencia en el paciente. Uno de los objetivos de la anestesia total intravenosa es disminuir el tiempo de recuperación de la anestesia y acelerar el alta del paciente, así mismo se ha demostrado una buena calidad de recuperación como la anestesia inhalada (Raffe, 2020). El concepto de TIVA es un procedimiento que implica la administración conjunta de anestésicos, analgésicos y relajantes musculares cuando, la misma que es controlada manualmente, con el principio específico de mantener las 11 concentraciones plasmáticas de fármacos con la menor fluctuación y dentro de una ventana terapéutica, que genera estabilidad cardiovascular, pulmonar y termodinámica, además que se metabolizan rápidamente por lo que podría ser beneficiosa para su uso en conejos (Otero, 2022). 2.1.8. Anestesia inyectable La anestesia inyectable o conocida como intramuscular es utilizada en procedimientos veterinarios cortos, la anestesia aplicada por vía intramuscular es una de las más utilizadas en animales exóticos, por lo tanto, su uso en conejos este regularizado conejo, pero la elevada tasa metabólica del animal, dificulta la acción completa del anestésico a utilizar, limita el tiempo de sedación y por lo tanto el tiempo de manipulación quirúrgica del paciente (Caldas, 2021). El mayor inconveniente de los protocolos de anestesia inyectable, es que, tras su administración, la eliminación del anestésico escapa del control total del anestesista, por lo que los casos de sobredosificación presentan el peor pronóstico que cuando se administra un agente inhalatorio. Por este motivo, resulta importante conocer las formas de absorción, las rutas metabólicas y las propiedades anestésicas de los agentes inyectables, ya que sus bases farmacocinéticas son esenciales para un uso seguro en los aniamles (Soto, 2010). 2.1.9. Ketamina Es un derivado de las fenciclidinas posee varias propiedades de tipo anestésicas, sedantes y analgésicas, se la utiliza principalmente para la inducción y el mantenimiento, además puede tener un efecto anestésico local y se ha usado para la anestesia regional intravenosa (Bustamante, 2021). El mecanismo farmacocinético demuestra que la ketamina antagoniza el neurotransmisor excitatorio llamado glutamato, en los receptores de la N-metil-D- aspartato (NMDA) en el sistema nervioso central (SNC). Proporciona restricción química o anestesia disociativa, analgesia visceral perioperatoria y somática profundas, además que inhibe la sensibilización de tipo central a través del bloqueo 12 del receptor NMDA. La anestesia disociativa se asocia siempre con una estimulación del gasto cardiaco y de la presión sanguínea de manera leve, seguida de una depresión respiratoria modesta como la conservación de los reflejos de los nervios craneales (Ramsey, 2018). Por lo tanto, los animales permanecen con los ojos abiertos durante la anestesia y, por tanto, se los debe proteger con un ungüento oftálmico. Si se utiliza en dosis adecuadas para proporcionar anestesia general la ketamina produce hipertonicidad del músculo esquelético, por lo que se suele presentar movimientos que no están relacionados con el procedimiento. Estos efectos se controlan con la coadministración de agonistas alfa-2 adrenérgicos y/o benzodiazepinas. Cuando la ketamina se combina con agonistas alfa-2 (medetomidina, dexmedetomidina) (Ramsey, 2018). 2.1.10. Farmacocinética La ketamina después de adminístrala por vía intramuscular alcanza una concentración máxima a los 10 minutos. En la inducción de la anestesia al ser aplicada intramuscular o subcutánea transcurre un lapso de 10 a 15 minutos para que la anestesia se desarrolle, esto se debe a que la ketamina pasa rápidamente la barrera hematoencefálica para después ser metabolizada inmediatamente en el hígado (Baquerizo & Delgado, 2019). 2.1.11. Farmacodinamia Se caracteriza por ejercer estimulación sobre el sistema cardiovascular aumentando la frecuencia cardiaca, el gasto cardiaco y la presión arterial, ya que actúa excitando de forma central al sistema nervioso autónomo simpático (SNAS). Actúa principalmente sobre receptores NMDA (N-metil-D-aspartato) generando anestesia disociativa y analgesia importantes, a diferencia de otros fármacos que trabajan sobre receptores GABA. Se recomienda para su uso en la inducción y mantención de anestesia en procedimientos de corta a mediana duración en la mayoría de especies animales sin mayores complicaciones (Caldas, 2021). 13 2.1.11. Posología Según Middleton (2015) las dosis recomendadas en conejos son de 15-30 mg/kg intramuscular, subcutánea administrada sola, dosis elevadas produce que la recuperación se extienda. También se puede usar a dosis de 15- 20 mg/kg intravenoso como inductor anestésico o de mantenimiento (Portilla, 2020). 2.1.12. Dexmedetomidina Agonista alfa-2 adrenérgicos de los adrenoreceptores periféricos y centrales, generando sedación, relajación muscular y analgesia de tipo dependiente de la dosis, la combinación de dexmedetomidina – ketamina se utiliza para proporcionar anestesia de corta duración (20-30) minutos. La dexmedetomidina también genera analgesia por infusión a velocidad constante (Ramsey, 2018). La dexmedetomidina es una molécula del dextroenantiomero puro de la medetomidina, ya que el enantiómero levomedetomidina es en gran parte inactivo, la dexmedetomidina tiene dos veces la potencia que la mezcla racémica original (medetomidina). La administración de dexmedetomidina reduca la carga biológica que se da al animal, lo que produce un metabolismo más rápido de los fármacos anestésicos administrados simultáneamente y recuperación pronta de la anestesia (Ramsey, 2018). La dexmedetomidina es un sedante potente que produce cambios importantes en el sistema cardiovascular como vasoconstricción periférica inicial que produce un incremento de la presión arterial y efecto bradicardia de compensación, al cabo de 20 a 30 minutos la vasoconstricción deja de tener efecto, mientras que la presión arterial se estabiliza, mientras que la frecuencia cardiaca se mantiene baja por el efecto simpaticolítico central de los agonistas alfa-2. Estos cambios generan hipotensión o disminución del gasto cardíaco, pero con valores estables, así como la frecuencia respiratoria, que al disminuir puede compensar con mayor profundidad respiratoria, siempre toda anestesia debe estar suministrada con suplementación obligatoria de oxígeno (Ramsey, 2018). 14 La duración de la analgesia a dosis de 5µg/kg de dexmedetomidina es de aproximadamente una hora, la reversión de la sedación con dexmedetomidina se lo hace con atipamezol, al final del procedimiento para acortar el período de recuperación (Ramsey, 2018). 2.1.13. Farmacocinética Se puede administrar la dexmedetomidina por vía endovenosa (IT), vía subcutánea (SC) o intramuscular (IM) y es rápidamente absorbida en el organismo. El modelo que mejor se ajusta a las características de este fármaco es uno bicompartimental, mantiene una tasa de unión a proteínas plasmáticas del 94% y lo hace principalmente a la seroalbúmina y a1-glicoproteína ácida. El metabolismo es principalmente hepático, mediante hidroxilación y N-metilación. Su eliminación es por vía renal en un 95%, en forma de conjugados metil y glucurónicos y su tiempo medio de eliminación es de 2 horas (Estupiñan, 2020). 2.1.14. Farmacodinamia La administración de dexmedetomidina por vía sistémica e intratecal, en animales produce respuestas analgésicas, al ser utilizada como premedicación, presenta efecto dosis-dependiente, a dosis de efecto sedante, la dexmedetomidina, disminuye la dosis-dependiente y las concentraciones de GMPc cerebeloso (Cabrejo, 2011). Los alfa 2-agonistas disminuyen los requerimientos de otros fármacos en la inducción y mantenimiento anestésico, esto se debe al efecto inhibitorio sobre la transmisión central noradrenérgica propia de este grupo de fármacos y se cree que también es por un lugar adicional de acción de los α2 agonistas, diferente del receptor presináptico auto inhibidor de las vías noradrenérgicas, que mediaría la acción reductora de la concentración alveolar mínima (CAM) de los anestésicos volátiles, provocada por los α2-agonistas. Al ser utilizada la dexmedetomidina como premedicación, se ha verificado que produce una disminución de los requerimientos de fármacos de tipo hipnóticos, opiáceos y de los anestésicos halogenados (Cabrejo, 2011). 15 2.1.15. Posología La dosis de dexmedetomidina en conejos va entre 0.05 a 0.125 mg/kg/IM (Techera, 2023). La dosis para conejos es 0.005 mg/kg IM como pre anestésico combinado con ketamina, también puede ser administrado a dosis de 0.035-0.05 mg/kg IM para inducción y mantenimiento acompañado de ketamina (Portilla, 2020). 2.1.16. Monitoreo Anestésico El objetivo de la monitorización de las constantes fisiológicas del paciente durante el proceso anestésico es el reconocer rápidamente cualquier tipo de variación en los valores normales de dichas constantes a fin de poder corregirlas de manera inmediata y así evitar cualquier tipo de problema que se presente en el proceso quirúrgico, las cuales deben ser monitorizadas cada 5 a 10 minutos con el fin de otorgar un valor diagnóstico a las mismas, mostrando el comportamiento adecuado de las funciones orgánicas del paciente, durante el tiempo que dure el proceso anestésico o quirúrgico, la ejecución y mantenimiento de un adecuado proceso de anestesia, generalmente, requiere mucho más que la selección del protocolo anestésico apropiado, es necesario observar al animal y evaluar sus respuestas durante el procedimiento, para llevar una anestesia segura y efectiva (Vilcahuamán, 2018). El conejo debe ser monitoreado de cerca para determinar que la profundidad anestésica sea suficiente y para asegurar que el animal permanezca fisiológicamente estable. Así mismo se debe controlar la profundidad anestésica antes y durante el procedimiento que se esté llevando a cabo, por ello el médico veterinario debe poder anticiparse a múltiples complicaciones que se presenten para actuar con prontitud y así maximizar la seguridad de nuestro paciente (Ulloa, 2023). Se sabe que la anestesia tiene efectos negativos sobre la homeostasis del paciente, por lo que es prudente asumir, que cualquier animal que se encuentre bajo un procedimiento anestésico, podrá afectarse los mecanismos de compensación fisiológica. Estas variaciones pueden ser afectadas por el estado de salud del paciente, su metabolismo como la distribución de los anestésicos administrados. 16 Para ello debemos monitorear continuamente al paciente (sistema cardiovascular, aparato respiratorio, presencia de reflejos, profundidad anestésica) permitiéndonos así conocer la extensión del compromiso de cada sistema corporal durante la anestesia, brindando signos de alerta, y la posibilidad de poder intervenir inmediatamente en pro de mantener la vida del paciente (Vilcahuamán, 2018). 2.1.17. Color de las membranas mucosas El color de las mucosas es parte del examen objetivo general que nos brinda información importante, aunque objetiva del tono vascular periférico y de la perfusión de los órganos, si las mucosas se presentan pálidas representa vasoconstricción periférica y si están oscuras se asocia a hipercapnia, y si se encuentran de color morado o llamadas cianóticas significan desoxigenación arterial (Alvarenga, 2021). 2.1.18. Tiempo de llenado capilar El tiempo de llenado capilar normal en conejos es de menos de 2 segundos. Un tiempo de llenado normal no indica necesariamente una buena perfusión sistémica, y cuando el tiempo es mayor a 2 segundos puede significar deshidratación, hipovolemia, vasoconstricción periférica, o disminución de la perfusión por la disminución del gasto cardíaco (Jamie et al., 2023). 2.1.19. Efecto anestésico El tiempo del efecto anestésico se evaluó desde la premedicación hasta la recuperación del paciente, el análisis de la recuperación post anestésica de los animales se lo hizo mediante valoración a través de la escala de Aldrete, misma que constó de 5 ítems, cada uno de ellos correspondió a una escala de puntuación de 0 a 2 con un rango total de valoración de 0 a 10, esta escala fue de gran utilidad para evaluar las funciones normales del paciente como la actividad motora, respiración, circulación, nivel de conciencia y saturación arterial de oxígeno, y el análisis se lo hizo cada cinco minutos hasta completar 40 minutos que duró el análisis. 17 Tabla 2. Escala de Aldrete: Recuperación post- anestésica Características Respuesta Puntaje Actividad Mueve 4 extremidades voluntariamente o ante ordenes Mueve 2 extremidades voluntariamente o ante ordenes Incapaz de mover extremidades 2 1 0 Respiración Capaz de respirar profundamente y toser libremente Disnea o limitación a la respiración Apnea 2 1 0 Circulación PA ≤ 20% del nivel preanestésico PA 20-49% del nivel preanestésico PA ≥ 50% del nivel preanestésico 2 1 0 Conciencia Completamente despierto Responde a la llamada No responde 2 1 0 Sao2 Mantiene SaO2 > 92% con aire ambiente Necesita O2 para mantener SaO2 < 90% SaO2 < 90% con O2 suplementario 2 1 0 2.1.19. Profundidad Anestésica Para la valoración del plano anestésico en conejos se debe tomar en cuenta la relajación de la mandíbula, ausencia de respuesta al estímulo doloroso sobre las orejas y la ausencia del reflejo de retirada de las extremidades al pellizcar la piel de entre los interdigitales de las extremidades de los animales (Graham et al., 2021). La pérdida de respuesta a un estímulo doloroso no se produce de manera uniforme en todas las zonas del cuerpo, por lo que generalmente la ausencia del reflejo de retirada de los miembros posteriores es suficiente como indicador confiable de la profundidad anestésica, sin embargo, no tiene por qué desaparecer en miembros anteriores para poder efectuar la cirugía (Techera, 2023). El grado de relajación muscular de los conejos dependerá de la profundidad anestésica y que está relacionado a los fármacos utilizados, el tono muscular disminuye progresivamente, a manera que la profundidad anestésica aumenta, desapareciendo el tono de la mandíbula, un indicativo de que la anestesia profunda se ha presentado (Vilcahuamán, 2018). 18 Tabla 3. Definición de los estados anestésicos y escala numérica atribuida 2.1.20. Frecuencia cardíaca La frecuencia cardiaca puede ser severamente influenciada por mecanismos intrínsecos y extrínsecos, siendo lo más importantes el grado de profundidad anestésica que puede generar cuadro de taquicardia en planos anestésicos leves, y bradicardia en planos anestésicos profundos (Vilcahuamán, 2018). La frecuencia cardiaca de los conejos tiende a ser elevada por lo que podría resultar un poco difícil de medir con un estetoscopio únicamente, se recomienda utilizar siempre un monitor multiparamétrico y los latidos están dentro del rango de 180 a 350 latidos por minuto (Vennen y Mitchell, 2020). 2.1.21. Frecuencia respiratoria La frecuencia respiratoria es la única variable fisiológica que puede ser evaluada visualmente, ya que podemos ver la caja torácica expandirse con cada inspiración a fin de determinar la frecuencia y el patrón respiratorio, el que debe ser regular, profundo y uniforme. El uso de un fonendoscopio tradicional y la observación Estado anestésico Signos clínicos observados Escala numérica de anestesia Despierto Totalmente despierto y alerta. 0 Sedado Relajado, pero aún sensible a la estimulación y con reflejo de rigidez presente. 1 Anestesia superficial Ha perdido el reflejo de giro a la derecha, pero sigue respondiendo a cualquier estímulo. 2 Anestesia media Sólo responde a estímulos dolorosos (reflejo de pellizco en la oreja y reflejo de retirada del pedal). 3 Anestesia quirúrgica No responde a la estimulación dolorosa (reflejo de pellizco en la oreja y reflejo de retirada del pedal), pero sigue teniendo reflejo corneal 4 19 directa son métodos simples para monitorear la respiración y el rango esta entre 32 a 60 respiraciones por minuto en conejos adultos (Caldas, 2021). 2.1.22. Saturación de oxígeno La oximetría de pulso o pulsioximetría es un método no invasivo que mide el porcentaje de saturación de oxígeno en la hemoglobina arterial (SpO2). Los valores arrojados por el oxímetro se relacionan directamente con los valores de oxígeno arterial (PaO2). Un valor normal de SpO2 es de 96% o más (Techera, 2023). 2.1.23. Temperatura La temperatura corporal debe ser controlada continuamente, ya que por la superficie corporal que poseen estos animales, son predisponentes a presentar hipotermia, la cual incrementa la posibilidad de generar complicaciones anestésicas, como lenta recuperación de la anestesia, exacerbación de enfermedades respiratorias silentes e inclusive la muerte, se les debe proveer de confort térmico a través de del uso de paños, mantas térmicas, bolsas de agua caliente, como el previo calentamiento de fluidos intravenosos, el rango de conejos de la temperatura rectal es de 37.8 a 39.4 ℃ (Vennen y Mitchell, 2020). 20 CAPÍTULO III 3.1. MARCO METODOLÓGICO 3.1.1. Ubicación y características de la investigación El proyecto de investigación se realizó en la provincia de Tungurahua, ubicado en la ciudad de Ambato en la Clínica Veterinaria Centro. 3.1.2. Situación geográfica y edafoclimática Ambato mantiene los siguientes parámetros geográficos: Altitud: 2.752 m.s.n.m Latitud: -1.30163 -78.65136 Longitud: -1.21602 – 78.56832 Temperatura máxima: 22 °C Temperatura mínima: 10 °C Temperatura media anual: 15.7 °C Humedad relativa (%): 80.73 °C 3.1.3. Zona de vida De acuerdo con la sistematización de zonas de vida publicada por Leslie Holdridge, el cantón Ambato corresponde a la formación de Bosque Húmedo Montano Bajo (Holdridge, 1967). 3.2. Metodología 3.2.1. Material en estudio 20 conejos domésticos (Oryctolagus cuniculus) 3.2.2. Factores en estudio Factor A: Conejos 21 Factor B: Protocolo anestésico 3.2.3. Tratamientos Código Descripción A1B1 Conejo + ketamina 15mg/kg + midazolam 0,3mg/kg + propofol 3mg/kg + sevoflurano (KMPS) A2B2 Conejo + dexmedetomidina 50 µg/kg + ketamina 15mg/kg + dexmedetomidina 1 ml/kg/h + ketamina 1mg/kg/h (KD) 3.2.4. Tipo de diseño experimental o estadístico El proyecto de investigación utilizó un diseño completamente al azar, con 10 conejos adultos por cada protocolo anestésico. 3.2.5. Manejo de la investigación De manera primaria se seleccionó 20 conejos adultos sanos, con edades comprendidas entre 6 meses a un 1 año y se los dividió en dos grupos, el primero se lo llamó grupo KMPS (ketamina, midazolam, propofol y sevoflurano) y el segundo grupo KD (ketamina y dexmedetomidina) con 10 conejos en cada uno, los pacientes antes de ser ingresados al quirófano fueron evaluados clínicamente, para lo cual se realizó un examen físico general en donde se registró las constantes fisiológicas como: frecuencia cardiaca (FC), frecuencia respiratoria (FR), temperatura (℃), y coloración de mucosas, y se los mantuvo con un ayuno de 3 horas de sólidos y 1 hora de líquidos. Numero de tratamientos 2 Tamaño de la unidad experimental Número de animales por tratamiento Número total de unidades experimentales 1 10 20 22 Premedicación En el primer grupo (KMPS) se utilizó ketamina a dosis de 15mg/kg + midazolam (0,3 mg/kg) por vía intramuscular, mientras que para el segundo grupo (KD) se utilizó dexmedetomidina a 50 µg/kg por vía intramuscular. Fluidoterapia de mantenimiento anestésico Una vez que estuvieron premedicados los conejos se los ubicó en posición decúbito esternal donde se procedió a canular con catéter calibre 26 en la vena cefálica o auricular para lo cual se realizó la tricotomía de la zona, previa asepsia de la piel con alcohol 70% y una vez con el acceso venoso se procedió a insertar la solución salina (NaCl al 0.9%) a una velocidad de 10 ml/Kg/h. Inducción En este procedimiento el grupo KMPS fue inducido con Propofol por vía intravenosa a una dosis de 3mg/Kg, y el segundo grupo KD se utilizó ketamina endovenosa a una dosis de 15 mg/Kg. Intubación Antes de la intubación se realizó la pre oxigenación de todos los conejos por un lapso de 5 minutos hasta lograr una vía aérea permeable. Una vez que el paciente se encontró en plano anestésico quirúrgico se procedió con la intubación mediante la utilización de un dispositivo supraglótico de V-gel®. Mantenimiento Para el mantenimiento del plano anestésico del grupo KMPS se lo realizó mediante anestesia inhalatoria con sevoflurano a una CAM del 4%, mientras que para el segundo grupo KD se lo realizó mediante la combinación de dexmedetomidina a dosis de 1 ml/Kg/h más ketamina (1 ml/Kg/h) a infusión constante, mediante la ayuda de una jeringa de perfusión, la cual se la calibró con el peso de cada animal experimental. 23 3.2.6. Métodos de evaluación Frecuencia cardíaca (Fc) Se evaluó mediante el uso de un monitor multiparamétrico cada 5 minutos en cada conejo adulto anestesiado hasta completar los 40 minutos que duró el análisis del experimento y se lo expresó en latidos cardíacos por minuto. Frecuencia respiratoria (Fr) Se evaluó mediante la observación de los movimientos respiratorios de la caja torácica al expandirse con cada inspiración a fin de determinar la frecuencia y el patrón respiratorio de cada conejo adulto anestesiado cada 5 minutos hasta completar los 40 minutos que duró el análisis del experimento y se lo expresó en respiraciones por minuto. Saturación de oxígeno (SpO2) La saturación de oxígeno se evaluó mediante el uso de un pulsioxímetro y se lo hizo cada 5 minutos en cada conejo anestesiado hasta completar los 40 minutos que duró la evaluación del experimento y se lo expresó en porcentaje (%). Temperatura rectal (℃) Será midió con un termómetro digital, y mediante el uso de sondas termopares insertadas en el recto las cuales nos brindaron lecturas que se las realizó cada cinco minutos hasta completar los 40 minutos que duró el análisis, esta variable se la expresó en ℃. Tiempo de efecto anestésico El tiempo del efecto anestésico se evaluó desde la premedicación hasta la recuperación del paciente, el análisis de la recuperación post anestésica de los animales se lo hizo mediante valoración a través de la escala de Aldrete, misma que constó de 5 ítems, cada uno de ellos correspondió a una escala de puntuación de 0 a 2 con un rango total de valoración de 0 a 10, esta escala fue de gran utilidad para 24 evaluar las funciones normales del paciente como la actividad motora, respiración, circulación, nivel de conciencia y saturación arterial de oxígeno, y el análisis se lo hizo cada cinco minutos hasta completar 40 minutos que duró el análisis. Nivel y profundidad Anestésica La valoración de la profundidad anestésica se realizó mediante una escala de estados anestésicos y escala numérica atribuida, en la cual el 0 representó al animal totalmente despierto y el número 5 a un animal con profundidad anestésica peligrosa, esta valoración se basó en reflejos fisiológicos como el pupilar, palpebral, posición de los ojos, reflejo postural, tono muscular y reflejo podal. Análisis de datos La normalidad de los datos de las constantes fisiológicas (Fc, Fr, SpO2 y T℃) se analizó mediante el test de Shapiro Wilk, y la homogeneidad de varianza por el test de Levene, y para el estudio comparativo entre protocolos anestésicos se utilizó la prueba paramétrica t de Student para muestras independientes. Para el análisis del tiempo del efecto anestésico se lo realizó con la prueba de Wilcoxon para muestras independientes, y finalmente el nivel profundidad anestésica se lo evalúo con test exacto de Fisher mediante el uso de una tabla de contingencia. 25 CAPÍTULO IV 4.1. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 4.2. INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS 4.2.1. Frecuencia Cardiaca Tabla 4. Frecuencia cardíaca entre grupos anestésicos Minutos KMPS Media DE KD Media DE 5 234a 17.51 192.5b 13.33 10 232.8a 19.71 189.8b 15.41 15 230a 13.58 196.3b 14.57 20 225.9a 11.21 195.9b 13.72 25 229a 11.17 198.6b 12.69 30 233.05a 15.99 197.98b 10.98 35 232.50a 18.66 199.4b 8.38 40 227a 17.76 201.3b 6.86 Nota: KMPS: (ketamina, midazolam, propofol y sevoflurano); KD: (ketamina, dexmedetomidina), DE: desviación estándar Figura 1. Frecuencia cardíaca entre grupos anestésicos 26 Los resultados de las medias analizadas mostraron que el grupo KMPS presenta valores más elevados de frecuencia cardíaca que el grupo KD en todo el tiempo analizado (40 minutos), el análisis t de Student reveló una diferencia significativa p =< 0.001 entre ambos grupos anestésicos evaluados. Los valores mostraron que en el grupo KD se observó una disminución de latidos por minuto de la Fc, lo cual sugiere que el efecto de disminución de los latidos/minuto de este grupo se mantuvo en todo momento del análisis de la anestesia, siendo más pronunciado a los 5 y 10 minutos posteriores a la misma. La investigación se muestra de manera similar a la realizada por Rufino ( 2021), en la cual la frecuencia cardíaca con el uso de dexmedetomidina y ketamina como protocolo anestésico mantuvo valores similares a la presente investigación en todos los minutos analizados (5 hasta 35), mientras que se observa una diferencia con la investigación de Hedenqvist et al (2019), en la cual la frecuencia cardíaca mostró valores más bajos de 140, siendo el más alto de 180 latidos por minuto en todo el período de evaluación. 4.2.2. Frecuencia Respiratoria Tabla 5. Frecuencia respiratoria entre grupos anestésicos Minutos KMPS Media DE KD Media DE 5 38.1ª 8.72 38.8ª 6.39 10 40.4ª 8.3 39.6ª 6.85 15 41.0a 6.91 40.3ª 5.91 20 41.8ª 7.02 41.8ª 5.53 25 42.8ª 5.83 42.0a 5.01 30 43.6ª 2.91 43.3ª 4.99 35 44.5ª 3.69 44.7ª 5.5 40 44.6a 3.75 44.3ª 5.29 Nota: KMPS: (ketamina, midazolam, propofol y sevoflurano); KD: (ketamina + dexmedetomidina); DE: desviación estándar 27 Figura 2. Frecuencia respiratoria entre grupos anestésicos Los resultados de las medias analizadas mostraron valores de frecuencia respiratoria muy cercanos entre sí, por lo tanto, el análisis t de student revelo que no existió diferencias significativas entre grupos anestésicos analizados (KMPS y KD). Lo cual sugiere que no existió cambios pronunciados de la frecuencia respiratoria a lo largo de la anestesia. De la misma manera lo manifiesta (Hedenqvist et al., 2019) que al usar el protocolo de dexmedetomidina conjuntamente con ketamina mostró valores de frecuencia respiratoria similares a la presente investigación en los minutos analizados mientras que se observa una diferencia con la investigación realizada por (Rufino, 2021) en la cual la frecuencia respiratoria mostro valores similares a los cinco minutos, no obstante indico valores con diferencia significativa de 24 respiraciones en los minutos 10, 15, 20, 25, 30, 35 y 40. 28 4.2.3. Saturación de oxígeno Tabla 6. Saturación de oxígeno entre grupos anestésicos Minutos KMPS Media DE KD Media DE 5 96.6a 1.65 96.9a 1.29 10 96.9a 1.66 97.1a 1.20 15 96.8a 1.48 96.7a 1.42 20 96.8a 1.23 97.1a 1.10 25 96.9a 1.37 96.6a 1.17 30 97.4a 0.97 97.6a 1.17 35 97.4a 1.71 97.4a 0.97 40 97.8a 1.23 97.1a 1.2 Nota: KMPS: (ketamina, midazolam, propofol, sevoflurano) KD: (ketamina + dexmedetomidina); DE: desviación estándar. Figura 3. Saturación de oxígeno entre grupos anestésicos 29 La Tabla 6 muestra que los valores de saturación de oxígeno (SpO2) entre los grupos KMPS y KD no mostraron diferencia significativa en todos los minutos analizados. Lo cual sugiere que no existió cambios pronunciados de la SpO2 a lo largo de la anestesia. De la misma manera lo manifiestan Grint & Murison (2019), en la variable saturación de oxígeno con valores similares a la presente investigación, a lo cual concluyen que el protocolo de dexmedetomidina y ketamina no representó un riesgo anestésico en los conejos, de la misma manera lo detallaron Sayce et al (2020) en los valores de saturación de oxígeno. 4.2.4. Temperatura rectal Tabla 7. Temperatura rectal entre grupos anestésicos Minutos KMPS Media DE KD Media DE 5 37.8a 0.27 37.79a 0.31 10 37.79a 0.31 37.71a 0.46 15 37.87a 0.39 37.89a 0.36 20 37.82a 0.45 37.95a 0.43 25 37.80a 0.47 37.97a 0.39 30 37.83a 0.45 37.89a 0.43 35 37.82a 0.45 37.94a 0.39 40 37.83a 0.57 37.96a 0.30 Nota: KMPS: (ketamina, midazolam, propofol, sevoflurano) KD: (ketamina + dexmedetomidina); DE: desviación estándar. 30 Figura 4. Temperatura rectal entre grupos anestésicos Los resultados mostraron que no existió diferencias significativas en los valores de temperatura rectal (℃) entre los grupos KMPS y KD. De la misma manera lo manifiesta Rufino (2021) los valores de temperatura se comportaron similares a la presente investigación, en el tiempo analizado; mientras que la investigación realizada por Sayce et al (2020) indicó valores con diferencia significativa en los minutos 5, 10, 15, 20, 25 y 30. 4.2.5. Tiempo de efecto anestésico Tabla 8. Tiempo de efecto anestésico entre grupos anestésicos Tratamientos KMPS (minutos) KD (minutos) Media (DE) 30 (12.25) 24 (15) Mediana (RI) 30a (22.5) 22.5a (15) Nota: RI: rango intercuartílico, DE: desviación estándar, KMPS (ketamina, midazolam, propofol, sevoflurano; KD (ketamina, dexmedetomidina). 31 Figura 5. Tiempo de efecto anestésico entre grupos anestésicos Los resultados indican que el grupo KMPS mantuvo una media de efecto anestésico de 30 minutos con respecto al grupo KD que fue de 24. Al analizar esta variable con la prueba Wilcoxon se observó que no existió diferencia significativa entre los dos grupos anestésicos analizados (p = 0.315). De la misma manera lo determinó Rufino (2021) con un efecto anestésico de 23.14 minutos, muy similar a lo obtenido en la presente investigación. 4.2.6. Nivel y profundidad anestésica Tabla 9. Nivel y profundidad anestésica entre grupos anestésicos Adecuada Inadecuada Total KMPS 9 (45%) 1 (5%) 10 (50%) KD 10 (50%) 0 (0%) 10 (50%) Total 19 (95%) 1 (5%) 20 (100%) Nota: KMPS: (ketamina, midazolam, propofol, sevoflurano); KD: grupo propuesto (ketamina + dexmedetomidina). 32 Figura 6. Nivel y profundidad anestésica entre grupos anestésicos El análisis de la profundidad anestésica se evaluó mediante la prueba exacta de Fisher (p = 1), y no fue significativo p < 0.05 entre ambos grupos anestésicos analizados, como se presenta en la tabla de contingencia los dos grupos KMPS y KD mostraron 19 anestesias adecuadas, en contraposición con 1 anestesia inadecuada, de un total de 20 conejos anestesiados. Así mismo lo manifiesta Rufino (2021), los conejos analizados mostraron en un 90% anestesia quirúrgica tipo tres, de la misma manera lo determinó la investigación realizada por Sayce et al (2020) con un 89% de presencia de anestesia quirúrgica profunda en todo el momento del análisis de la anestesia. 33 4.3. COMPROBACIÓN DE HIPÓTESIS. La comprobación de la hipótesis, basada en el análisis de los resultados obtenidos, muestran que existió diferencias significativas en la frecuencia cardíaca en todo el tiempo de evaluación anestésica entre grupos analizados, en contraposición con la frecuencia respiratoria, saturación de oxígeno y temperatura rectal que no mostró significancia entre ellos, así como el análisis del efecto y profundidad anestésica, estos resultados permiten rechazar la hipótesis alternativa, sugiriendo que la aplicación de ketamina y dexmedetomidina como protocolo anestésico no presentó diferencias significativas frente al grupo ketamina, midazolam, propofol, sevoflurano de anestesia en conejos. 34 CAPÍTULO V 5.1. Conclusiones y recomendaciones 5.1.1. Conclusiones • Los valores de frecuencia cardíaca mantuvieron una diferencia significativa en todos los minutos analizados entre los grupos KMPS y KD, contrario a las variables fisiológicas frecuencia respiratoria, saturación de oxígeno y temperatura rectal que no presentaron diferencia significativa entre ellos. • El tiempo de efecto anestésico fue evaluada a través de la escala de Aldrete, el tiempo de recuperación post anestésico del grupo KMPS fue de 30 minutos, los pacientes mostraron conciencia total y recuperación de sus reflejos, mientras que el grupo KD el tiempo de recuperación fue de 24 minutos y no presentaron diferencia significativa entre grupos anestésicos. • El uso de ambos protocolos anestésicos produjo un estado de anestesia quirúrgica adecuada tipo 4, valorada través de una escala de estados anestésicos, comportándose ambos grupos de manera ideal para su uso en procedimientos anestésicos en lagomorfos. 35 5.1.2. Recomendaciones • Se recomienda en futuras investigaciones ampliar el análisis con factores como raza, sexo y edad, lo cual sería interesante observar si existe o no significancia en la respuesta anestésica. • El análisis de una variedad de alfa 2 agonistas en el protocolo anestésico podría formar parte de futuras investigaciones para que se analice a profundidad los efectos cardiovasculares como la hipotensión y bradicardia, a manera de determinar la eficacia y seguridad en su uso en lagomorfos. • Se recomienda el uso del protocolo ketamina y dexmedetomidina en conejos, en procedimientos quirúrgicos menores o como coadyuvante en la analgesia. 36 BIBLIOGRAFÍA Alvarenga Artiga, R. F. (2021). Parámetros de monitorización bajo anestesia de perros y gatos. Revista Agrociencia, 5(20), 74-78. Obtenido de https://www.agronomia.ues.edu.sv/agrociencia/index.php/agrociencia/article /view/37 Anónimo. (2018). Guidelines on Anesthesia and Analgesia in Rabbits. Animal care & use program University of Michigan, 21(1). Obtenido de https://az.research.umich.edu/animalcare/guidelines/guidelines-anesthesia- and-analgesia-rabbits Argente , M., Abad Salazar, D., Bermejo González, E., García, M., & López Palazón, A. (2019). Reference Values for Selected Blood Parameters in Rabbits: Effects of Age and Physiological Status. Indian Journal of Animal Research. doi:10.18805/ijar.B-1165 Aricelli, K. V. (2022). Comparaciòn de efectos fisiològicos de ketamina versus propofol como inductor anestèsico en conejos (Oryctolagus cuniculus)[Tesis para optar el tìtulo de profesional de Mèdico Veterinario Zootecnista,Universidad Cientìfica del Sur ]. Repositorio Intitucional. Obtenido de https://hdl.handle.net/20.500.12805/1766 Baquerizo Orrala, Z. I., & Delgado Tapia, W. S. (2019). Evaluaciòn de la combinaciòn anestèsica Ketamina-Propofol con Dexmedetomidina por vìa intramuscular en gatas para ovariohisterectomìa en la clìnica veterinaria de la Universidad de Guayaquil [Tesis para optar el tìtulo de Medico Veterinario Zootecnista]. Respositorio Institucional. Obtenido de http://repositorio.ug.edu.ec/handle/redug/49345 Bennett, K., & Lewis, K. (2022). Sedation and Anesthesia in Rodents. Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice, 25(1), 211-255. doi:https://doi.org/10.1016/j.cvex.2021.08.013 Bobadilla, S., Ojeda, R., & Cuevas, M. (2021). Invasive European Wild Rabbits (Oryctolagus cuniculus) in Argentina: State of the Art and Prospects for Research. Springer, Cham, 187-201. doi:https://doi.org/10.1007/978-3-030- 56379-0_9 Bustamante Domínguez , R. (2021). Aplicación clínica de la anestesia total intravenosa en perros [Tesis Doctoral, Universidad Complutense de Madrid 37 ]. Respositorio Institucional. Obtenido de https://hdl.handle.net/20.500.14352/11381 Cabrejo Saavedra, C. A. (2011). Dexmedetomidina. REDVET. Revista Electrónica de Veterinaria, 12(6), 1-11. Obtenido de http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=63622160014 Caldas Siavichay, C. D. (2021). Valoración de tres protocolos anestésicos en base a constantes fisiológicas y evaluación de la profundidad de la sedación enconejos (Oryctolagus cuniculus)[ Tesis para optar al tìtulo de Mèdico Veterinario Zootecnista, Universidad de Cuenca ]. Repositorio Institucional. Obtenido de http://dspace.ucuenca.edu.ec/handle/123456789/37535 Camacho , F. S. (2020). Manual de urgencias anestésicas en conejos, gatos y perros [Tesis para optener el título en licenciatura en Medicina Veterinaria y Zootecnia, Univerisdad Autónoma Metropolitana ]. Repositorio Institucional. Obtenido de https://repositorio.xoc.uam.mx/jspui/handle/123456789/38937. Cabrero Niubó, M., & Riera Tort, A. (2008). Animales exóticos. In Manual de ATV (Issue July, p. 447). https://www.researchgate.net/profile/Lain-Garcia- Guasch/publication/233980567_Manual_del_ATV/links/578f93bb08aec234 68b65ea4/Manual-del-ATV.pdf Cárdenas Carbajal, J. (2019). Medición de la presión arterial en conejos (Oryctolagus cuniculus) sometidos a tres protocolos anestésicos [Universidad Ricardo Palma]. In Universidad Ricardo Palma Facultad. https://repositorio.urp.edu.pe/server/api/core/bitstreams/ed488a7a-856b- 4144-98c9-add5de4b3bea/content Cardoso, C., Ayer, I., Jorge A., Honsho, C., & Mattos-Junior, E. (2020). A comparite study of the cardioplumonary and sedative effects of a single intramuscular dose of ketamine anesthesic combinations in rabbits. Research in Veterinary Science, 128, 177-188. htpps://doi.org/10.1016/j.rvsc.2019.11.016. Chae, J. J., Prausnitz,, M. R., & Ross , E. C. (2021). Effects of General Anesthesia on Intraocular Pressure in Rabbits. 60(1), 91-95. doi:https://doi.org/10.30802/AALAS-JAALAS-20-000016 Claure Oviedo, R. M. (2022). Protocolos de anestesia en clínica y cirugía de animales menores en la clínica veterinaria “Zoo Life[Tesis para optar el tìtulo de licenciatura en Medicina Veterinaria y Zootecnia,Universidad Evangèlica Boliviana ]. Repositorio Institucional. Obtenido de https://www.difuciencia.com/files/original/493ccc66e19be301d385dbbd107 e9e897e98da9f.pdf 38 Corpas Escudero, P. (2016). El conejo como animal de compañía: castración en machos y hembras.[ Tesis de fin de grado en Veterinaria, Universidad de Zaragoza ]. Repositorio Intitucional. Obtenido de https://zaguan.unizar.es/record/56884 Engbers, S., Larkin, A., Rousset, N., Prebble, M., Jonnalagadda, M., Knight, C., & Pang, D. (2017). Comparison of a Supraglottic Airway Device (v-gel®) with Blind Orotracheal Intubation in Rabbits. Frontiers in veterinary Science, 4(49). doi:https://doi.org/10.3389%2Ffvets.2017.00049 Escarramán Martínez, D., Montes Alvarado, M., Lima Molina, A., Montiel Jarquín, Á., & García Galicia, A. (2021). Variabilidad de presión de pulso y pletismográfica en pacientes. Revista del Hospital Juàrez de Mèxico, 88(4), 164-169. doi:10.24875/RHJM.20000117 Estupiñan Torres, D. (2020). Uso de la dexmedetomidina en la anestesiología veterinaria actual y análisis de protocolo anestésico en 3 pacientes caninos [Tesis para optar el tìtulo de Medico Veterinario Zootecnista,Universidad Cooperativa de Colombia ]. Repositorio Institucional. Obtenido de http://hdl.handle.net/20.500.12494/20315. Fish, R., Danneman, P., Brown, M., & Karas, A. (2008). Anesthesia and analgesia in laboratory animals. (2 ed.). Elsevier. Gardhouse, S., & Sanchez, A. (2022). Rabbit Sedation and Anesthesia. Veterinary clinics: Exotic Animal Practice, 25(1), 181-210. doi:https://doi.org/10.1016/j.cvex.2021.08.012 Graham, J. E., Doss, G. A., & Beaufrère, H. (2021). Exotic Animal Emergency and Critical Care Medicine. (1 ed.). Wiley-Blackwell. Grimm, K. A., Lamont, L. A., Tranquilli, W. J., Greene, S. A., & Robertson, S. (2015). Veterinary Anesthesia and Analgesia : the Fifth Edition of Lumb and Jones (5 ed.). Wiley-Blackwell. Grint, N., & Murison, P. (2019). A comparison of ketamine-midazolam and ketamine-medetomidine combinations for induction of anaesthesia in rabbits. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, 35(2), 113–121. https://doi.org/10.1111/j.1467-2995.2007.00362.x Hedenqvist, P., Roughan, J., Orr, H., & Antunes, L. M. (2019). Assessment of ketamine/medetomidine anaesthesia in the New Zealand White rabbit. Veterinary Anaesthesia and Analgesia, 28(1), 18–25. 39 https://www.tesble.com/https://doi.org/10.1046/j.1467-2995.2001.00019.x Jamie, M., Creedon, B., & Davis, H. (2023). Advanced Monitoring and Procedures for Small Animal Emergency and Critical Care (1 ed.). Wiley-Blackwell. Lynn C. Anderson, James G. Fox, Glen M. Otto, Kathleen R. Pritchett-Corning, & Mark T. Whary. (2015). Medicina de animales de laboratorio (3 ed.). Academic Press. Mazaheri-Khameneh R, S.-R. F., A.-R. S., & D.-N. B. (2012). Evaluation of clinical and paraclinical effects of intraosseous vs intravenous administration of propofol on general anesthesia in rabbits. Vet Res Forum, 3(2), 103–109. Obtenido de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/pmc4312804/ Middleton, S. (2015). Guía Veterinaria de bolsillo (1 ed.). Lexus. Nobre viera, C., Uscategui, R. A., Noriega, J., Gasser, B., Pazzini, J. M., De Almeida, V., . . . De Andrade, J. (2022). Eficacia y seguridad de morfina y metadona como analgésicos en un protocolo anestésico balanceado en conejos. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 33(4). doi:https://doi.org/10.15381/rivep.v33i4.23358 Otero, P. (2022). Protocolos anestèsicos y manejo del dolor en pequeños animales. (1 ed.). Inter Mèdica. Páramo Alfaro , M. (2022). Desarrollo de un modelo animal de Atrofia -Hipertrofia y daño hepatico tras radioembolizaciòn lobar con YTRIO-90 en conejos. Universidad de Navarra. Obtenido de https://hdl.handle.net/10171/63800 Pavel, M. A., Petersen, E. N., Wang, H., & Hansen, S. B. (2020). Studies on the mechanism of general anesthesia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 117(24), 13757-13766. doi:https://doi.org/10.1073/pnas.2004259117 Pèrez Rivero Cruz, J. J., Rèndon, E. F., & Lòpez Reyna, O. A. (2014). Manual de técnicas quirúrgicas en el conejo (Oryctolagus Cuniculus) utilizadas en docencia e investigación (1 ed.). Universidad Autónoma Metropolitana. Portilla Bisso, G. M. (2020). Protocolos anestésicos en conejos (Oryctolagus coniculus): una revisión bibliográfica [Tesis para optar el tìtulo de Bachiller en Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Cientìfica del Sur ]. 40 Repositorio Institucional. Obtenido de https://hdl.handle.net/20.500.12805/1230 Raffe, M. R. (2020). Total Intravenous Anesthesia for the Small Animal Critical Patient. Veterinary Clinics of North America: Small Animale Practice, 50(6), 1433-1444. doi:https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2020.07.007 Ramsey, I. (2018). Vademècum Farmacològico para perros y gatos (9 ed.). Lexus. Rioja Garcìa, E., Salazar Nussio, V., Martìnez Fernàndez, M., & Martìnez Taboada, F. (2022). Manual de anestesia y analgesia de pequeños animales (2 ed.). Servet. Rufino, D. (2021). Descripción de los efectos anestesiológicos del clorhidrato de dexmedetomidina (PRECEDEX) en asociación con clohidrato de ketamina (IMALGENE 1000) en el conejo doméstico. UNiversidad de Chile. Sayce, L., Powell, M., Kimball, E., Chen, P., Gartling, G., & Rousseau, B. (2020). Continuous Rate Infusion of Ketamine Hydrochloride and Dexmedetomidine for Maintenance of Anesthesia during Laryngotracheal Surgery in New Zealand White Rabbits (Oryctolagus cuniculus). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 59(2), 176–185. https://www.ingentaconnect.com/content/aalas/jaalas/2020/00000059/00000 002/art00010 Scarabelli, S., & Nardini, G. (2020). Basic principles of anaesthesia of small mammals: part 2. Companion Animal, 25(3), 1–8. https://www.tesble.com/10.12968/coan.2019.0064 Soto Cabrera, M. A. (2010). Descripción del comportamiento anestésico del conejo doméstico (Oryctolagus cuniculus) frente a la inducción y redosificación con ketamina intravenosa (IV) [Tesis para optar el tìtulo de Profesional de Médico Veterinario, Universidad de Chile ]. Repositorio Institucional. Obtenido de https://repositorio.uchile.cl/handle/2250/131375 Sumano Lòpez, H. S., & Ocampo Camberos, L. (2006). Farmacologìa Veterinaria (3 ed.). McGraw-Hill. Techera Techera , M. (2023). Actualización y reconocimiento de factores asociados a la mortalidad peri-anestésica en conejos (Oryctolagus cuniculus) y cobayos (Cavia porcellus) [ Tesis para obtener el tìtulo de Doctor en Ciencias Veterinarias, Universidad de la Repùblica de Uruguay ]. Repositorio Institucional. Obtenido de https://hdl.handle.net/20.500.12008/41691 41 Ulloa Pérez , M. G. (2023). Manifestaciones clínicas asociadas a sobrecrecimiento dental en conejos domésticos (0ryctolagus cuniculus) atendidos en la clínica veterinaria petcafé [Tesis para optar al tìtulo de Licenciada en Medicina Veteria y zootecnia].RepositorioInstitucional.doi:http://repositorio.ucc.edu.ni/id/eprint /1270 van Zeeland, Y., & Schoemaker, N. (2021). Analgesia , Anesthesia , and Monitoring. Vennen, K., & Mitchell, M. (2020). Rabbits. In Manual of Exotic Pet Practice (pp. 375–405). 10.1016/B978-141600119-5.50017-2 Ventura, K. (2020). Comparación de efectos fisiológicos de ketamina versus propofol como inductor anestésico en conejos (Oryctolagus cuniculus) [Universidad Científica del Sur]. https://repositorio.cientifica.edu.pe/handle/20.500.12805/1766 Ventura Mendiola de Rodriguez , K. A. (2020). Comparación de efectos fisiológicos de ketamina versus propofol como inductor anestésico en conejos (oryctolagus cuniculus)[Tesis para optar el tìtulo de Medico Veterinario Zootecnista, Universidad científica del Sur]. Repositorio Institucional. Obtenido de https://hdl.handle.net/20.500.12805/1766 Vilcahuamán Bernaola, G. (2018). Monitoreo anestésico en conejos (Oryctolagus cuniculus) con un protocolo de acepromazina, propofol y tramadol [ Tesis para optar el tìtulo profesional de Medico Veterinario, Universidad Ricardo Palma ]. Repositorio Institucional. Obtenido de https://hdl.handle.net/20.500.14138/1679 ANEXOS Anexo 1. Mapa de ubicación de la investigación Nota. Obtenido de (Google Maps,2024). Anexo 2. Croquis del ensayo KMPS 10 conejos KD 10 conejos Grupo Ketamina, Midazolam, Propofol y Sevoflurano Grupo Ketamina y Dexmedetomidina Anexo 3. Base de Datos ID Tratamiento Tiempo Fc Fr Spo2 TºC Profundidad Anestésica 1 KMPS 5 240 40 100 37,8 4 2 KMPS 5 236 31 95 37,6 4 3 KMPS 5 252 57 96 37,7 3 4 KMPS 5 224 40 96 37,2 4 5 KMPS 5 248 30 98 37,7 4 6 KMPS 5 236 28 98 37,9 4 7 KMPS 5 239 39 96 37,9 4 8 KMPS 5 189 31 95 38 4 9 KMPS 5 237 40 97 38 4 10 KMPS 5 240 45 95 38,2 4 11 KD 5 176 37 98 38 4 12 KD 5 204 47 98 37,7 4 13 KD 5 176 33 96 37,7 4 14 KD 5 209 47 98 37,9 4 15 KD 5 203 38 98 37,7 4 16 KD 5 193 40 95 38,2 4 17 KD 5 209 39 95 37,2 4 18 KD 5 178 29 98 37,8 4 19 KD 5 192 46 96 38,2 4 20 KD 5 185 32 97 37,5 4 1 KMPS 10 220 43 100 37,8 4 2 KMPS 10 212 38 98 37,7 4 3 KMPS 10 260 59 95 37,7 3 4 KMPS 10 248 39 97 37,1 4 5 KMPS 10 244 32 96 37,6 4 6 KMPS 10 239 33 98 37,7 4 7 KMPS 10 246 40 98 38,1 4 8 KMPS 10 193 31 95 38,1 4 9 KMPS 10 231 42 97 38,1 4 10 KMPS 10 235 47 95 38 4 11 KD 10 172 36 99 38,1 4 12 KD 10 180 49 97 37,8 4 13 KD 10 172 33 98 37,3 4 14 KD 10 209 48 97 38,3 4 15 KD 10 200 39 98 37,2 4 16 KD 10 196 40 97 38,2 4 17 KD 10 217 40 95 37,2 4 18 KD 10 178 33 98 37,3 4 19 KD 10 188 48 96 38,2 4 20 KD 10 186 30 96 37,5 4 1 KMPS 15 216 43 99 37,7 4 2 KMPS 15 232 38 98 37,7 4 3 KMPS 15 236 55 95 37,7 4 4 KMPS 15 236 37 97 37,3 4 5 KMPS 15 248 37 96 37,6 4 6 KMPS 15 228 36 97 37,7 4 7 KMPS 15 244 44 97 38,2 4 8 KMPS 15 201 30 97 38,1 4 9 KMPS 15 235 44 98 38,7 4 10 KMPS 15 229 46 94 38 4 11 KD 15 188 40 99 38,2 4 12 KD 15 192 50 98 38,2 4 13 KD 15 176 35 96 37,8 4 14 KD 15 211 46 97 38,3 4 15 KD 15 206 40 98 37,5 4 16 KD 15 210 40 95 38,2 4 17 KD 15 215 42 95 37,4 4 18 KD 15 176 35 97 37,5 4 19 KD 15 203 45 95 38,2 4 20 KD 15 186 30 97 37,6 4 1 KMPS 20 224 46 99 37,7 4 2 KMPS 20 220 32 96 37,5 4 3 KMPS 20 224 55 95 37,7 4 4 KMPS 20 228 36 96 37,3 4 5 KMPS 20 237 40 97 37,6 4 6 KMPS 20 231 39 98 37,4 4 7 KMPS 20 240 43 97 38,2 4 8 KMPS 20 200 34 96 38,1 4 9 KMPS 20 222 45 98 38,8 4 10 KMPS 20 233 48 96 37,9 4 11 KD 20 192 39 96 38,4 4 12 KD 20 200 51 98 38,2 4 13 KD 20 180 39 97 37,8 4 14 KD 20 212 49 98 38,6 4 15 KD 20 199 41 96 37,8 4 16 KD 20 204 42 97 38 4 17 KD 20 213 40 96 37,4 4 18 KD 20 182 35 98 37,2 4 19 KD 20 204 47 96 38,2 4 20 KD 20 173 35 99 37,9 4 1 KMPS 25 224 54 99 37,7 4 2 KMPS 25 228 34 96 37,4 4 3 KMPS 25 228 45 97 37,8 4 4 KMPS 25 224 42 95 37,2 4 5 KMPS 25 228 38 97 37,8 4 6 KMPS 25 210 39 98 37,2 4 7 KMPS 25 254 45 98 38,2 4 8 KMPS 25 238 38 95 38,1 4 9 KMPS 25 228 45 98 38,7 4 10 KMPS 25 228 48 96 37,9 4 11 KD 25 192 37 96 38,3 4 12 KD 25 208 49 96 38,1 4 13 KD 25 196 43 97 37,8 4 14 KD 25 209 49 98 38,8 4 15 KD 25 211 41 95 37,9 4 16 KD 25 200 41 98 38 4 17 KD 25 204 41 95 37,5 4 18 KD 25 188 35 98 37,4 4 19 KD 25 208 47 96 38 4 20 KD 25 170 37 97 37,9 4 1 KMPS 30 212 40 99 37,9 4 2 KMPS 30 236 41 98 37,5 4 3 KMPS 30 216 46 97 37,9 4 4 KMPS 30 236 41 96 37,1 4 5 KMPS 30 220 44 97 37,8 4 6 KMPS 30 228 42 98 37,2 4 7 KMPS 30 258 50 98 38,4 4 8 KMPS 30 260 44 96 38,3 4 9 KMPS 30 231 44 98 38,3 4 10 KMPS 30 233 44 97 37,9 4 11 KD 30 188 37 99 38,7 4 12 KD 30 212 49 97 37,2 4 13 KD 30 196 41 99 37,7 4 14 KD 30 206 50 98 38,4 4 15 KD 30 209 45 96 37,9 4 16 KD 30 188 45 98 38 4 17 KD 30 200 41 97 37,9 4 18 KD 30 192 37 97 37,4 4 19 KD 30 208 49 96 37,8 4 20 KD 30 179 39 99 37,9 4 1 KMPS 35 198 41 100 37,9 4 2 KMPS 35 244 43 100 37,5 4 3 KMPS 35 220 48 96 37,9 4 4 KMPS 35 240 39 96 37 4 5 KMPS 35 224 47 98 38,1 4 6 KMPS 35 220 44 98 37,2 4 7 KMPS 35 260 52 97 38,2 4 8 KMPS 35 257 44 96 38,3 4 9 KMPS 35 229 43 98 38,3 4 10 KMPS 35 233 44 95 37,8 4 11 KD 35 204 35 99 38,6 4 12 KD 35 200 50 97 37,2 4 13 KD 35 188 40 98 38 4 14 KD 35 213 51 97 38,4 4 15 KD 35 209 47 96 37,9 4 16 KD 35 188 47 97 38 4 17 KD 35 196 46 97 38 4 18 KD 35 196 38 99 37,5 4 19 KD 35 205 50 97 37,9 4 20 KD 35 195 43 97 37,9 4 1 KMPS 40 194 44 99 37,8 4 2 KMPS 40 244 44 100 37,6 4 3 KMPS 40 212 42 97 38 4 4 KMPS 40 232 39 98 36,7 4 5 KMPS 40 212 52 98 38,2 4 6 KMPS 40 218 42 98 37,2 4 7 KMPS 40 247 48 9 38,4 4 8 KMPS 40 248 43 96 38,5 4 9 KMPS 40 228 48 98 38,3 4 10 KMPS 40 235 44 96 37,6 4 11 KD 40 200 35 97 38,4 4 12 KD 40 205 50 98 37,5 4 13 KD 40 200 41 98 38,1 4 14 KD 40 203 50 98 38,3 4 15 KD 40 212 49 95 37,9 4 16 KD 40 195 44 97 37,9 4 17 KD 40 196 45 96 38 4 18 KD 40 190 38 97 37,5 4 19 KD 40 201 49 96 37,9 4 20 KD 40 211 42 99 38,1 4 ID Tratamiento Tiempo Tiempo Anestésico 1 KMPS 0 4 2 KMPS 0 4 3 KMPS 0 4 4 KMPS 0 4 5 KMPS 0 6 6 KMPS 0 4 7 KMPS 0 4 8 KMPS 0 4 9 KMPS 0 4 10 KMPS 0 4 11 KD 0 4 12 KD 0 4 13 KD 0 4 14 KD 0 4 15 KD 0 4 16 KD 0 4 17 KD 0 4 18 KD 0 4 19 KD 0 5 20 KD 0 4 1 KMPS 5 6 2 KMPS 5 4 3 KMPS 5 4 4 KMPS 5 4 5 KMPS 5 7 6 KMPS 5 4 7 KMPS 5 4 8 KMPS 5 5 9 KMPS 5 4 10 KMPS 5 4 11 KD 5 5 12 KD 5 5 13 KD 5 4 14 KD 5 4 15 KD 5 4 16 KD 5 6 17 KD 5 6 18 KD 5 5 19 KD 5 5 20 KD 5 5 1 KMPS 10 7 2 KMPS 10 6 3 KMPS 10 4 4 KMPS 10 7 5 KMPS 10 8 6 KMPS 10 4 7 KMPS 10 7 8 KMPS 10 7 9 KMPS 10 7 10 KMPS 10 7 11 KD 10 7 12 KD 10 6 13 KD 10 5 14 KD 10 7 15 KD 10 7 16 KD 10 7 17 KD 10 7 18 KD 10 7 19 KD 10 7 20 KD 10 7 1 KMPS 15 8 2 KMPS 15 7 3 KMPS 15 6 4 KMPS 15 9 5 KMPS 15 10 6 KMPS 15 7 7 KMPS 15 7 8 KMPS 15 7 9 KMPS 15 9 10 KMPS 15 7 11 KD 15 9 12 KD 15 8 13 KD 15 7 14 KD 15 9 15 KD 15 9 16 KD 15 9 17 KD 15 9 18 KD 15 8 19 KD 15 8 20 KD 15 7 1 KMPS 30 10 2 KMPS 30 7 3 KMPS 30 9 4 KMPS 30 5 KMPS 30 6 KMPS 30 8 7 KMPS 30 9 8 KMPS 30 10 9 KMPS 30 10 KMPS 30 7 11 KD 30 12 KD 30 10 13 KD 30 8 14 KD 30 15 KD 30 16 KD 30 17 KD 30 18 KD 30 9 19 KD 30 9 20 KD 30 9 1 KMPS 45 2 KMPS 45 10 3 KMPS 45 4 KMPS 45 5 KMPS 45 6 KMPS 45 9 7 KMPS 45 8 KMPS 45 9 KMPS 45 10 KMPS 45 9 11 KD 45 12 KD 45 13 KD 45 10 14 KD 45 15 KD 45 16 KD 45 17 KD 45 18 KD 45 19 KD 45 20 KD 45 1 KMPS 60 2 KMPS 60 3 KMPS 60 4 KMPS 60 5 KMPS 60 6 KMPS 60 7 KMPS 60 8 KMPS 60 9 KMPS 60 10 KMPS 60 11 KD 60 12 KD 60 13 KD 60 14 KD 60 15 KD 60 16 KD 60 17 KD 60 18 KD 60 19 KD 60 20 KD 60 Anexo 3. Evidencias Fotográficas 1. Evaluaciòn del paciente 2. Pre oxigenaciòn del paciente 3. Inducciòn Anestesica 4. Evaluaciòn Frecuencia Cardiaca 5. Evaluación Frecuencia Respiratoria 6. Medición Temperatura Rectal 7. Monitorizacion Anestesica 8. Paciente Grupo KD 9. Paciente Grupo KMPS 10. Paciente despierto 11. Visita de campo por parte del tribunal Anexo 4. Formatos de Fichas de recolección de datos Anexo 5. Glosario de términos técnicos Apnea: Es la detención de la respiración cuando los músculos en la parte superior de la garganta se relajan durante el sueño, los tejidos se cierran y bloquean la vía respiratoria. Bradicardia: La bradicardia también conocida como frecuencia cardíaca baja o ritmo cardíaco lento puede ser un problema grave para el corazón porque no permite que bombee la suficiente sangre oxigenada para el cuerpo. Bradipnea: La bradipnea es el término médico utilizado para referirse a la disminución de la frecuencia respiratoria. Desmetilación: La desmetilación es una reacción química caracterizada por la eliminación de un grupo metilo de una molécula de un compuesto químico. Disnea: Es la sensación subjetiva de dificultad para respirar o falta de aire. Fluctuación: Característica típica de los abscesos, que consiste en que su área más próxima a la piel es la que más inflamada está externamente, y a causa de la desvitalización de la piel se deprime fácilmente, notándose que lo que hay debajo no es tejido sólido, sino contenido líquido. Hidroxilación: Es una reacción química en la que se introduce un grupo hidroxilo en un compuesto reemplazando un átomo de hidrógeno, oxidando al compuesto. Hipertonicidad: Exceso de tono muscular. Los músculos están rígidos, lo que causa dificultad para mover las extremidades. Hipotensión: Sucede cuando la presión arterial es mucho más baja de lo normal. Esto significa que es posible que el corazón, el cerebro y otras partes del cuerpo no reciban suficiente sangre. Hipotermia: La hipotermia es una urgencia médica que ocurre cuando el cuerpo pierde calor más rápido de lo que lo produce, lo que provoca una peligrosa disminución de la temperatura corporal. Hipovolemia: Es la pérdida grave de sangre o de otro líquido hace que el corazón sea incapaz de bombear suficiente sangre al cuerpo. Inducción: Proceso de transición de un paciente consciente a un estado de inconsciencia profunda, generalmente para una intervención quirúrgica o un procedimiento médico. Modelo Bicompartimental: Es en el que los fármacos que se administran por vía intravenosa, difunden con rapidez al compartimento central y con más lentitud al compartimento periférico. Morbilidad: Se refiere a la presentación de una enfermedad o síntoma de una enfermedad, La morbilidad también se refiere a los problemas médicos que produce un tratamiento. Mortalidad: La mortalidad se refiere a las muertes sucedidas dentro de una población la probabilidad de morir durante un período determinado de tiempo se relaciona con muchos factores, como la edad, el sexo, la raza, la ocupación y la clase social. La incidencia de muerte puede revelar muchos detalles acerca del nivel de vida y la atención médica dentro de una población. Premedicaciòn: Administración de medicamentos antes de la anestesia con el objetivo de preparar al paciente para la intervención quirúrgica y mejorar la experiencia perioperatoria. Regurgitación: Expulsión involuntaria de contenido gástrico desde el estómago hacia el esófago y, en algunos casos, hacia la boca, sin que haya náuseas o contracciones abdominales fuertes. Sedantes: Es una sustancia que induce una sedación gradual dependiente de la dosis, reduciendo la irritabilidad o la excitación. Taquicardia: Se conoce como taquicardia el aumento de la frecuencia cardiaca causada por una contracción demasiado rápida de los ventrículos, la taquicardia provoca que el corazón no sea capaz de bombear la sangre de forma eficiente al resto del cuerpo, lo que hace que algunos órganos o tejidos se queden sin oxígeno suficiente. Vasoconstricción: Es el estrechamiento de vasos sanguíneos por parte de pequeños músculos en sus paredes. Vasodilatación: Ensanchamiento de los vasos sanguíneos, por lo general cerca de la superficie de la piel, lo que aumenta el flujo sanguíneo con enrojecimiento o calor.